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經驗分享:1.原代細胞鋪満瓶底后棄原液,PBS沖洗2次。2.加入0.25%Trypsin-0.02%EDTA,量覆蓋瓶底即可,室溫作用,鏡下觀察至組織塊周圍的細胞回縮,立體感增強。3.棄去消化液,PBS輕漂一遍(目的是除去EDTA,它對脆弱的原代細胞很不好)但不要用力搖晃,以免部分消化稍過的細胞流失。4.加入培養液吹打,不要產生氣泡,對細胞有損。5.吸出2/3的懸液傳入新瓶。6.向原瓶中余下的1/3細胞懸液中補加2/3的新培養液,與未消化的組織塊繼續培養。7.24小時內新的細胞又從組織塊中爬出啦
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三、實驗結果計算1.一只小鼠可獲得(1~2.5)×108個脾細胞。2.細胞接種后一般幾小時內就能貼壁,并開始生長,如接種的細胞密度適宜,5天到一周即可形成單層。3.一般情況,傳代后的細胞在2小時左右就能附著在培養瓶壁上,2~4天就可在瓶內形成單層,需要再次進行傳代。四、注意事項1.取材要求新鮮,無菌,解剖小鼠時,注意不要損傷脾臟及其周圍的臟器,尤其是腸道等,防止污染脾臟。2.沖洗脾臟時要盡量洗凈血污,去除無用組織,并要防止組織干燥。3.碾磨后及時用清水沖洗篩網,防止組織、細胞阻塞網孔。4.計數前
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一、實驗原理細胞培養可分為原代培養和傳代培養。直接從體內獲取的組織細胞進行培養為原代培養;當原代培養的細胞增殖達到一定密度后,則需要做再培養,即將培養的細胞分散后,從一個容器以1:2或其他比率轉移到另一個或幾個容器中擴大培養,為傳代培養,傳代培養的累積次數就是細胞的代數。細胞凍存及復蘇的基本原則是慢凍快融,實驗證明這樣可以zui大限度的保存細胞活力。目前細胞凍存多采用甘油或DMSO作保護劑,這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性,加上緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外,減少細胞內冰晶的形成,從而減少
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1.如果擴增曲線ct值比較靠后的話,32左右,一般有什么方法解決沒有ct值比較靠后,對實驗有一定的影響,因為經過那么多次的循環,酶的活性有可能有所下降,這時候擴增效率會有所改變(而定量PCR的理論基礎就是每次循環的擴增效率我們認為是確定的一個值)。因此能夠把ct值往前移。解決辦法可以將模板加以濃縮或者抽干之后用少量水去溶解。2.為什么合成的引物做不加摸板的對照也能擴增出目的條帶,而內參用同樣體系就沒有呢?引物被污染。3.實時定量PCR,熒光定量PCR,實時熒光定量PCR,real-timePCR
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1樣品RNA的抽提①取凍存已裂解的細胞,室溫放置5分鐘使其*溶解。②兩相分離每1ml的TRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2ml的仿,蓋緊管蓋。手動劇烈振蕩管體15秒后,15到30℃孵育2到3分鐘。4℃下12000rpm離心15分鐘。離心后混合液體將分為下層的紅色酚仿相,中間層以及無色水相上層。RNA全部被分配于水相中。水相上層的體積大約是勻漿時加入的TRIZOL試劑的60%。③RNA沉淀將水相上層轉移到一干凈無RNA酶的離心管中。加等體積異丙醇混合以沉淀其中的RNA,混勻后15到30℃孵育10
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實驗原理在細胞核中,DNA是環狀附著在核基質上,細胞裂解過程中,核基質被溶解、抽提,DNA的結構則未發生變化。如果DNA鏈上存在缺口,則使DNA超螺旋變的松弛,DNA環向外展,同時由于暴露了陰電荷,在電場力的作用下,松動的DNA環向陽極遷移,但是由于這種松動的DNA環一端仍附著于核DNA,其遷移距離受到限制,因此尾長并不總是真實反映鏈缺口的多少。實際應當依靠尾長與尾部的熒光強度同時來進行分析。實驗步驟1.分離制備單細胞懸液:1)體外培養的細胞株:用胰酶消化,吹打成單細胞懸液;2)體內臟器細胞:處
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實驗原理免疫電泳又稱為γ球蛋白電泳或免疫球蛋白電泳技術,這是一種能夠判斷血液中三種免疫球蛋白IgM,IgG,IgA含量水平的實驗方法。在這項實驗技術中,首先利用蛋白質的分子量和所帶電荷的比值運用水平瓊脂糖凝膠電泳技術將蛋白質進行分離,然后將特異性的抗體引入到與電泳方向平行的凹槽中,在抗原和抗體的擴散過程中,抗原和抗體適當比例的結合會導致沉淀的產生。0.85%鹽不僅可以終止擴散過程也可用于洗去未結合的蛋白,抗原和抗體結合所形成的沉淀線即可以肉眼觀察也可利用染色方法觀察。免疫電泳技術不僅可用于血清或
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實驗原理生物大分子如蛋白質、核酸、多糖等常以顆粒分散在溶液中.它們的凈電荷取決于介質的H濃度或與其他大分子的相互作用。在電場中,帶電顆粒向陰極或陽極遷移.遷移的方向取決于它們帶電的符號.這種遷移現象即謂電泳。遷移的方式目前可以根據分子尺寸大小、分子所帶的電荷或分子的生物學與化學特性分為三類。如果把生物大分子的膠體溶液放在一個沒有干擾的電場中,使顆粒具有一定遷移速率的驅動力來自于顆粒的有效電荷Q和電位梯度E。它們與介質的摩擦阻力f抗衡:在自由溶液中,這種抗衡服從斯托克斯定律。f=6πrvη這里v是