Forskolin

MCE 國際站：Forskolin

品牌：MedChemExpress (MCE)

CAS：66575-29-9

純度：0.9871

貨號：HY-15371

中文名稱：毛喉素

Synonyms：毛喉素; Coleonol; Colforsin; HL 362

存儲條件：4°C，避光保存 *溶劑中：-80°C，6 個月；-20°C，1 個月（避光保存）

運輸條件：美國大陸的室溫；其他地方可能有所不同。

產品活性：Forskolin (Coleonol) 是一種有效的腺苷酸環化酶 (adenylate cyclase) 激活劑，對于 I 型腺苷酸環化酶，IC50 為 41 nM，EC50 為 0.5 μM。Forskolin 也是一種細胞內 cAMP 形成的誘導劑。Forskolin 誘導多種細胞類型的分化并激活孕烷 X 受體 (PXR) 和 FXR。Forskolin 對心臟產生正性肌力作用，并具有血小板抗凝集和降壓作用。Forskolin 也可誘導細胞自噬 (autophagy)。

體外：Forskolin (Coleonol) 也是前列腺癌 (PC) 細胞中有效的外泌體生物合成和/或分泌激活劑[8]。 Forskolin (Fsk) 是一種從錦紫蘇中分離的天然二萜 forskholii，通過其催化亞基直接激活腺苷酸環化酶 (AC)，從而增加細胞內環磷酸腺苷 (cAMP) 的水平[1]。 Forskolin (Fsk) 影響人類 T 細胞系 (如 Kit 225 和 MT-2) 的增殖。Forskolin 處理以劑量依賴性方式抑制 Kit 225 和 MT-2 細胞的增殖，IC50 等于 ~5 μM Fsk。Forskolin 處理 (10-100 μM) 將 cAMPi 水平提高到基礎水平的 5 到 20 倍，達到最大水平 50-100 μM Forskolin[6]。 MCE尚未獨立證實這些方法的準確性。僅供參考。

體內：Forskolin (Coleonol) 處理的 Mrp4-/- 小鼠顯示 Ki67 陽性和裂解半胱天冬酶 3 陽性 EC 數量增加，周細胞覆蓋量顯著減少。在從 P7 到 P12 暴露于高氧 (75% 氧氣) 的幼崽中，Mrp4-/- 小鼠顯示無血管化視網膜區域顯著增加[2]。 健康大鼠組平均血糖為 102.12±1.94 mg/dL，對照組為 101.25±3.56，Forskolin 組為 103±2.08。數據顯示，Forskolin 組在研究結束時的血糖水平較低，根據所應用的統計檢驗具有顯著差異 (p=0.03)[7]。 MCE尚未獨立證實這些方法的準確性。僅供參考。

動物實驗：小鼠[3] 使用 C57BL/6J 小鼠。Mrp4 基因敲除小鼠，建立并反復與 C57BL/6J 小鼠回交。在出生后第 4 天 (P4) 和第 5 天 (P5) 給新生小鼠腹膜內注射 Forskolin。注射 DMSO 的小鼠作為對照。在 P6 時對接受治療的小鼠實施安·樂死，并分離其視網膜進行全封片免疫組織化學 (IHC)。首先測試不同濃度的 Forskolin 對存活率和視網膜血管的影響，并確定最佳濃度，P4 時為 1.0 μg/50 μL (0.3 mg/kg)，P5 時為 1.5 μg/50 μL (0.5 mg/kg)，用于比較 WT 小鼠和 Mrp4 缺陷小鼠之間的視網膜血管表型。大鼠[4] 雄性 Wistar 大鼠，10-14 周齡，平均體重 300 g±50 g，分為四組；19 只實驗性誘發糖尿病，8 只維持健康狀態。糖尿病大鼠和健康大鼠均不接受 Forskolin（對照組），或每天口服 6 mg/kg Forskolin，連續 8 周。在 Forskolin 治療前后測定各組的血糖水平。在確認糖尿病存在兩周后（誘發后三周）和指·定治療八周后對糖尿病大鼠進行檢測。MCE 尚未獨立證實這些方法的準確性。它們僅供參考。

細胞實驗：將 Quiescent Kit 225 或 MT-2 細胞以每孔 5×104 細胞的密度接種到 96 孔板中。然后用 1% DMSO（載體）或 Forskolin（濃度為 1、5、10、25、50 和 100 μM）預處理細胞 1 小時。用 IL-2 刺激細胞并在 37°C 下再培養 20 小時。對照細胞用 1% DMSO 處理 20 小時。在孵育的最后 4 小時，用濃度為 0.5 μCi/200 μL 的 [3H] 胸苷脈沖細胞。將細胞收集到玻璃纖維過濾器上，并使用液體閃爍計數進行分析[2]。MCE 尚未獨立證實這些方法的準確性。它們僅供參考。

IC50 & Target：41 nM (Adenylyl cyclase)[1]EC50: 0.5 μM (Adenylyl cyclase)[1] 

參考文獻：

[1]. Robbins JD, et al. Forskolin carbamates: binding and activation studies with type I adenylyl cyclase. J Med Chem. 1996 Jul 5;39(14):2745-52.

[2]. Matsumiya W, et al. Forskolin modifies retinal vascular development in Mrp4-knockout mice. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012 Dec 7;53(13):8029-35. 

[3]. Mayati A, et al. Functional polarization of human hepatoma HepaRG cells in response to forskolin. Sci Rep. 2018 Oct 31;8(1):16115.

[4]. Awad JA, et al. Interactions of forskolin and adenylate cyclase. Effects on substrate kinetics and protection against inactivation by heat and N-ethylmaleimide. J Biol Chem. 1983 Mar 10;258(5):2960-5.

[5]. Seamon KB, et al. Structure-activity relationships for activation of adenylate cyclase by the diterpene forskolin and its derivatives. J Med Chem. 1983 Mar;26(3):436-9.

[6]. Ríos-Silva M, et al. Effect of chronic administration of forskolin on glycemia and oxidative stress in rats with and without experimental diabetes. Int J Med Sci. 2014 Mar 11;11(5):448-52.

[7]. Rodriguez G, et al. Forskolin-inducible cAMP pathway negatively regulates T-cell proliferation by uncoupling the interleukin-2 receptor complex. J Biol Chem. 2013 Mar 8;288(10):7137-46.

[8]. Amrita Datta, et al. High-throughput screening identified selective inhibitors of exosome biogenesis and secretion: A drug repurposing strategy for advanced cancer. Sci Rep. 2018 May 25;8(1):8161.