在生物醫(yī)學研究的廣闊領域中，細胞活性檢測扮演著至關重要的角色。它不僅幫助科學家們評估細胞的生存狀態(tài)，還能深入了解細胞對藥物、環(huán)境變化或病理過程的響應。細胞活性檢測通常包括測量細胞增殖、細胞毒性和細胞死亡等方面。今天，小愛向大家介紹細胞活性檢測的六大常用方法：ATP生物發(fā)光法、LDH檢測法、MTT比色法、CCK-8法、熒光染料法和細胞凋亡檢測法，一起揭秘細胞活力的科學奧秘。

1、ATP生物發(fā)光法

細胞內ATP（腺苷三磷酸）的含量是細胞能量代謝的直接指標。ATP生物發(fā)光法通過測量細胞內ATP的水平來評估細胞活性。這種方法具有高靈敏度和寬動態(tài)范圍，尤其適合于需要高靈敏度檢測的實驗。

圖1 ATP檢測試劑盒(abs580117)檢測細胞活性的原理圖

ATP生物發(fā)光法的主要原理是在有氧環(huán)境下，熒光素在熒光素酶和Mg²⁺的催化作用下與ATP發(fā)生反應，生成熒光素-AMP復合體并釋放出焦磷酸(PPi)。隨后，熒光素-AMP復合體在O₂的作用下進一步生成氧化熒光素，同時釋放出CO₂和H₂O。在這個過程中，激發(fā)態(tài)的氧化熒光素返回到基態(tài)時會發(fā)出光子，光子的數量與ATP含量成正比，因此可以通過測量光強度來定量ATP的含量。

2、LDH檢測法

乳酸脫氫酶(Lactate Dehydrogenase, LDH)是一種廣泛存在于細胞中的酶，它在糖酵解途徑中起著關鍵作用，能夠催化乳酸和丙酮酸之間的可逆反應。LDH催化乳酸產生丙酮酸，丙酮酸與 2,4-二硝基ben肼作用生成丙酮酸二硝基苯腙，后者在堿性溶液中呈棕紅色，顏色的深淺與丙酮酸的濃度呈正比，通過測定OD值，可計算LDH的活力。在細胞活性檢測中，LDH的釋放通常被用作細胞膜完整性的指標。當細胞膜受損時，細胞內的LDH會釋放到培養(yǎng)基中，通過測定培養(yǎng)基中LDH的活性，可以評估細胞的損傷或死亡程度。

3、MTT比色法

MTT（3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基四氮唑溴化物）比色法是一種經典的細胞活性檢測方法。它通過測量活細胞中脫氫酶的活性，將MTT還原成紫色的甲瓚產物，從而間接反映細胞的代謝活性。這種方法操作簡單，成本低廉，是實驗室中常用的篩選工具。

4、CCK-8法

CCK-8(Cell Counting Kit-8)法是一種基于WST-8（2-(2-甲氧基-4-硝基苯基)-3-(4-硝基苯基)-5-(2,4-二磺苯基)-2H-四唑單鈉鹽）的比色方法。它通過測量細胞線粒體脫氫酶的活性來評估細胞活性。CCK-8法具有較高的靈敏度和較寬的動態(tài)范圍，適合于各種細胞類型的活性檢測。

5、熒光染料法

熒光染料法利用特定的熒光染料，如Calcein-AM或CFSE，來標記活細胞。這些染料在活細胞內被代謝成熒光產物，通過流式細胞儀或熒光顯微鏡進行檢測。熒光染料法可以提供直觀的細胞活力圖像，適用于細胞增殖和遷移研究。

6、細胞凋亡檢測

細胞凋亡是細胞程序性死亡的過程，與細胞活性密切相關。通過Annexin V和PI（碘化丙啶）染色，可以檢測細胞表面的磷脂酰絲氨酸外化，從而評估細胞凋亡的程度。這種方法對于研究細胞死亡機制和藥物毒性具有重要意義。

細胞活性檢測六大常用方法優(yōu)缺點比較

每種方法都有其特定的應用場景和限制，選擇合適的檢測方法需要根據實驗的具體需求和條件來決定。

下面小愛著重為大家介紹具有高靈敏度、操作簡便、快速等優(yōu)點的ATP檢測法。

ATP檢測試劑盒(abs580117)使用方法

一、產品組成

二、使用方法

1、需自備的試劑和器材

1）細胞培養(yǎng)用pH7.4磷酸鹽緩沖液(PBS)

2）Triton X-100

3）系列可調節(jié)量程移液器及吸頭

4）離心管及白色96孔板

5）化學發(fā)光酶標儀

2、實驗前準備

1）樣品準備：

①細胞培養(yǎng)上清的準備：將需要測定的細胞接種到培養(yǎng)板中，經過干預因素處理后，直接吸取細胞上清，如果是懸浮細胞，4℃、300g離心5min，收集上清。

②細胞裂解上清的準備：將需要測定的細胞(1×10⁶-1×10⁷)收集到5mL的離心管中，4℃、300g離心5min，棄去上清，然后加入200μL含0.1%Triton X-100的PBS，冰浴裂解30min，4℃、10000g離心10min，收集上清。

③組織裂解上清的準備：將需要測定的組織(20-50mg)收集到玻璃勻漿器或自動勻漿管中，然后加入500μL含1%Triton X-100的PBS，勻漿1min，4℃、10000g離心10min，收集上清。

注：各種樣品，如果不立即進行測定，請凍存于-80℃；正式測定前根據預實驗結果，利用ATP Assay Buffer將樣品適當稀釋后進行測定。

2）標準品的準備：

在1.5mL離心管中，加入990μL ATP Assay Buffer，再取10μL的100μM濃度ATP Standard加入離心管中配制1μM濃度ATP Standard；然后取另外8根1.5mL離心管，分別加入200μL ATP Assay Buffer，再吸取200μL的1μM濃度ATP Standard依次倍比稀釋為0.5、0.25、0.125、0.0625、0.0312、0.0156、0.0078、0.0039μM濃度。

3）檢測工作液的準備：

ATP檢測工作液的配制：根據待測樣品數參考下表配制適當量的ATP檢測工作液，表中試劑按比例混合后即為ATP檢測工作液。

3、操作步驟

1）在白色96孔板中設置空白對照孔、標準品孔和樣品孔，參考下表，在空白對照孔中加入50μL ATP Assay Buffer，在標準品孔中加入50μL梯度濃度ATP 檢測工作液(0.0039-1μM)，在樣品孔中加入50 μL樣品。

2）如上表所示，各孔加入50μL的ATP檢測工作液，混勻，室溫孵育5min。

3）待反應完成后，利用化學發(fā)光酶標儀測定相對發(fā)光強度(RLU)。

4）計算結果：利用標準品濃度為橫坐標，RLU值為縱坐標制作標準曲線，并獲得橫縱坐標之間的函數關系式，然后利用各樣品的RLU值計算樣品中ATP濃度。ATP標曲測定如下圖所示：

細胞活性檢測是連接基礎研究與臨床應用的橋梁。通過上述六種常用方法，研究人員可以更準確地評估細胞的生存狀態(tài)，為疾病治療和藥物開發(fā)提供重要信息。隨著生物技術的不斷進步，未來可能會有更多創(chuàng)新的檢測方法問世，為我們揭示細胞活力的更多奧秘。

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