PCR技術的前世今生

科學家對核酸的研究已有100多年歷史，20世紀70年代初人們就致力于研究基因的分離技術。Khorana等于1971年最早提出核酸體外擴增理念：DNA變性解鏈后與相應引物雜交，用DNA聚合酶延伸，重復該過程便可以克隆基因^[1]。因為當時的技術尚未成熟，該設想一直未被證實。

直到在1985年，Mullis等用大腸桿菌DNA聚合酶體外擴增哺乳動物單拷貝基因成功（發明人Kary Banks Mulis也因此榮獲了后期的諾貝爾化學獎）。1988年Saiki等將耐熱DNA聚合酶（Taq酶）引入PCR技術，使擴增反應的特異性和效率大大提高，并簡化了操作程序，最終實現DNA擴增的自動化，迅速推動了PCR的應用和普及^[2]。隨著技術不斷改進，PCR技術已被廣泛應用于醫學、農學、植物病理學等研究領域。它從一種定性的分析方法發展到定量測定，也從原先只擴增幾個kb的基因到目前已能擴增長達幾十個kb的DNA片段。

PCR技術原理

PCR技術(Polymerase Chain Reaction)即聚合酶鏈式反應，指在DNA聚合酶的催化下，以母鏈DNA為模板，以特定引物為延伸起點。通過變性、退火、延伸等步驟，體外復制出與母鏈模板DNA互補的子鏈DNA的過程。反應的基本成分包括模板DNA、引物、4種脫氧核苷酸(dNTPs)、DNA聚合酶和適宜的緩沖液。

PCR技術的基本原理，類似于DNA的天然復制過程，其特異性依賴于與靶序列兩端互補的寡核苷酸引物。PCR技術主要包含以下幾個過程：

1）模板DNA變性：模板DNA經94℃加熱一定時間后，使模板DNA雙鏈解離形成單鏈，以便它與引物結合，為下輪反應做準備；
2）模板DNA與引物退火（復性）：模板DNA經加熱變性形成單鏈后，溫度下降至55℃左右，引物與模板DNA單鏈的互補序列配對結合；
3）引物的延伸：DNA模板—引物結合物在Taq DNA聚合酶作用下，在72℃左右，以dNTPs為反應原料，靶序列為模板，按堿基互補配對與半保留復制原則，合成一條新鏈。新合成的子鏈又重復循環變性——退火——延伸三個過程，以獲得更多的新鏈。每個循環需要2-4min，2-3h就能將待擴增的目的基因擴增放大幾百倍。

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PCR的種類

到目前為止，PCR技術發展出十幾種之多，本次小愛給大家科普下幾種常用的PCR。

1、普通PCR

就是我們實驗室常用的PCR，技術原理如上所述。普通PCR技術是分子生物實驗的基礎，可以用于基因的分離、克隆和核酸序列分析等基礎性研究，定性判斷核酸含量；同時用于疾病的診斷或任何與DNA、RNA相關的檢測應用。下面以一個實驗為例介紹普通PCR的常規操作步驟：

實驗所需試劑及耗材設備：

模板DNA、引物、Taq DNA聚合酶(5U/uL)、包含15mmol/L Mg²⁺的Buffer、ddH₂O、PCR儀、移液槍、PCR板、吸頭

實驗步驟：

1）配置PCR反應體系：

在PCR反應板中依次加入下列溶液：

模板DNA 2uL；上游引物1uL；下游引物1uL；dNTPs  1.5uL；Tag酶0.5uL；ddH₂O 使總體系達到20uL。

2）設置PCR反應程序：

94℃ 3min；94℃ 45s；55℃ 45s；72℃ 45s；72℃ 5min；4℃ 1h

3）上樣，啟動反應程序；

4）擴增產物進行瓊脂糖凝膠電泳。

愛必信擁有包含Taq DNA聚合酶、dNTPs、MgCl₂、反應緩沖液的PCR反應液，具有快速簡便、靈敏度高、特異性強、穩定性好等優點，可最大限度的減少人為誤差。使用時只需加入DNA模板和引物既可。

2、熱啟動PCR

熱啟動PCR(Hot Start PCR)是指它的Taq DNA聚合酶只有在樣品溫度至少超過70℃時才發揮作用的PCR，可提高反應的特異性。Taq DNA聚合酶通常在比適宜溫度低得多的條件下仍有較強的活性。PCR反應的最初加熱過程中，樣品溫度上升到70℃之前，在較低的溫度下引物可能與部分單鏈模板形成非特異性結合，并在Taq DNA聚合酶的作用下延伸，結果會導致非靶序列的擴增，影響反應的特異性。熱啟動可減少非靶序列的擴增，提高反應的特異性。在引物設計時如果某位點因為遺傳元件的定位而受限，如site-directed突變、表達克隆或用于DNA工程的遺傳元件的構建和操作等情況，熱啟動PCR尤為有效。愛必信熱啟動PCR相關試劑如下：

3、高保真PCR

高保真PCR主要依賴于高保真酶。普通Taq酶具有5'→3'DNA聚合酶活性和5'→3'的外切酶活性，缺少3'→5'的外切酶活性因而在合成中對某些單核苷酸錯配沒有校正功能。而高保真酶具有很強的校對功能，其保真度比普通Taq酶高50倍，遠高于其他同類酶。因此高保真PCR特別適用于質粒構建等實驗。愛必信高保真PCR相關試劑如下：

4、長片段擴增

Taq DNA聚合酶在擴增長度超過4kb的PCR產物時通常會失敗，原因包括非特異性引物退火、DNA模板中的二級結構和次優循環條件——所有這些因素對較長的PCR產物的擴增比對較短的PCR產物有更大的影響。在長程PCR中，防止DNA損失特別重要，因為模板內的單個DNA損傷足以使PCR酶停滯。PCR循環過程中的DNA損傷可以通過穩定反應pH的特定緩沖物質最小化。商業PCR試劑盒是專門為克服長程PCR的挑戰而設計的。

[1] 黃留玉.PCR新技術原理,方法及應用[M].化學工業出版社,2005.

[2] 鄧小紅,任海芳.PCR技術詳解及分析[J].重慶工商大學學報(自然科學版), 2007, 24(1):29-33.DOI:10.3969/j.issn.1672-058X.2007.01.009.

[3] 粟玉剛,程天印,董歡.熱啟動PCR技術的研究進展[J].畜牧獸醫科技信息, 2009(3):2.DOI:10.3969/j.issn.1671-6027.2009.03.004.

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