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【瑞士步琦】使用Sepmatix 8x SFC進行高效色譜柱篩選

來源:步琦實驗室設備貿易(上海)有限公司   2023年11月14日 14:22  

高效色譜柱篩選

 

尿嘧啶和黃嘌呤,即咖啡因、可可堿和茶堿,是一組在各種生物過程和人類消費中起重要作用的有機化合物[1-3]。這些分子屬于雜環化合物,其特點是含有碳原子和氮原子的環狀結構。尿嘧啶是 RNA(核糖核酸)的基本組成部分,RNA 是形成遺傳密碼并參與蛋白質合成的基本核堿基之一。另一方面,黃嘌呤、咖啡因、可可堿和茶堿是一類結構相似但生物效應不同的生物堿[1-3]。這些黃嘌呤存在于各種植物中,是一種眾所周知的興奮劑,可以穿過血腦屏障,影響中樞神經系統。在 RP(反相色譜)[1-3]條件下(SN_802_2023), LC(液相色譜)可分離生物堿。

 

超臨界流體色譜(SFC)是一種使用超臨界二氧化碳(CO2)作為流動相的基本成分的色譜技術。這種狀態的二氧化碳被稱為超臨界,它具有獨特的特性,如高擴散系數和低粘度,使其成為分離和分析化合物的絕佳溶劑。與傳統色譜方法相比,SFC 提供了許多優勢,包括更快的分析時間,更低的溶劑消耗和分離的差異選擇性。此外,與 RP-LC 相比,SFC 代表了一種正交技術,為各種分析挑戰提供了互補的分離能力。

 

在 SFC 中,色譜柱篩選包括測試不同的固定相,以找到最適合特定分離任務的固定相。固定相是色譜系統的重要組成部分,因為它直接影響色譜的選擇性。不同的固定相具有不同的化學功能和與分析物的相互作用,使它們或多或少地選擇特定的化合物。通過篩選和選擇合適的色譜柱,可以優化分離條件,以獲得更好的目標分析物的分辨率和靈敏度。

 

本文描述了使用 Sepmatix 8x SFC 儀器對尿嘧啶、咖啡因、可可堿和茶堿混合物進行平行柱篩選,隨后轉移到制備的 Sepiatec SFC-50。

 

1

設備

  • Sepiatec SFC-50 instrument

  • Sepmatix 8x SFC instrument

  • PrepPure Silica, 5μm, 250 x 10mm

  • PrepPure Diol, 5μm, 250 x 10mm

  • PrepPure Silica, 5μm, 250 x 4.6mm

  • PrepPure Diol, 5μm, 250 x 4.6mm

  • PrepPure Amino, 5μm, 250 x 4.6mm

  • PrepPure 2-EP, 5μm, 250 x 4.6mm

  • Reprosil 4-EP, 5μm, 250 x 4.6mm (Dr. Maisch GmbH)

  • PrepPure PEI, 5μm, 250 x 4.6mm

  • PrepPure CBD, 5μm, 250 x 4.6mm

  • Cyano, 5μm, 250 x 4.6mm, (Dr. Maisch GmbH)

 

2

試劑和材料

  • 二氧化碳(99.9%)

  • 甲醇(≥99%)

  • 尿嘧啶(99% + %)

  • 可可素(99%)

  • 咖啡(99%以上)

  • 茶堿(99%)

 

3

實驗

樣品制備:

在 50/2.5mL 甲醇/水混合液中,40℃ 下用超聲水浴溶解 0.05g 尿嘧啶,0.07g 咖啡因,0.055g 可可堿,0.085g 茶堿。

 

Sepmatix 8x SFC 篩選運行條件:

流動相:A =二氧化碳:甲醇

流速:3ml /min(每柱)

流動相條件:

0-0.5min:5% B

0.5-8.0min:5 - 50%

8.0-9.4min:50%

9.4-9.5min:50 - 5%

9.5-10min:5% B

檢測:紫外掃描波段:200nm - 600nm

 

篩選運行是自動開始的。使用流量控制單元將流量設置為每通道 3mL/min,并平衡色譜柱。自動進樣(V=5 μL),開始平行篩選(運行時間=10min)。背壓調節器設置為 150bar,柱箱加熱至 32°C。

 

SFC-50 運行條件:

流動相:A =二氧化碳;B=甲醇

流動相條件:等度運行條件

檢測:紫外波長 270nm

 

SFC 柱在規定的流速下條件預熱 3 分鐘,使用定量環自動注入樣品并開始運行。背壓調節器設置為 150bar,柱箱加熱至 40°C。

 

3

結果與討論

用 Sepmatix 8x SFC 篩選色譜柱:

為了確定樣品的最佳分離選擇性,進行了不同色譜柱的篩選。使用 Sepmatix 8x SFC 儀器可以高效地同時篩選8個色譜柱。因此,最佳選擇性可以在很短的時間內確定。為此,使用了 8 種不同的固定相:硅膠、二醇基、氨基、氰基、2-EP、4-EP、PEI 和 CBD,圖1顯示了篩選的結果。

 

圖1:Sepmatix 8x SFC 儀器篩選結果。從左到右依次為:硅膠、氨基、氰基、二醇基;下從左至右依次為:2-EP、4-EP、PEI、CBD 柱;運行時間=10分鐘

 

用分辨率(R)來衡量色譜方法在色譜圖中分離和區分兩個相鄰峰的能力,它量化了分析物相互分離的程度。表 1 顯示了 4 組分分離的分辨率值。使用 Sepmatix 軟件和以下公式自動確定:

 

 

  • 其中tR1 和 tR2 代表 組分 1 或組分 2 的保留時間

  • W1 和W2 代表分量1或分量 2 峰高一半處的寬度

 

在處理復雜的混合物時,分辨率尤其重要,因為它確保每個分析物都被很好地分離,并且可以準確地識別和定量。分辨率為 1 表示峰值根本沒有被分解,基本上是合并的,而更高的分辨率值表示峰值之間的分離更好。在使用過程中,分辨率至少應達到 1.5,才能以適當的定量和鑒定分析物。

 

色譜柱

R1

R2

R3

硅膠

1.57

4.18

3.79

氨基

5.42

1.26

4.44

氰基

未分離

3.35

1.69

二醇

3.92

5.1

2.29

2-EP

3.62

2.72

未分離

4-EP

9.46

2.87

未分離

PEI

9.93

1.86

10.8

CBD

5.01

1.27

4.51

表1:SFC 不同篩選條件下的分辨率值

 

R 值的篩選和評價表明,硅膠、二醇基和 PEI 相對樣品的分離選擇性最好。二醇基在運行時間和分辨率方面表現出最佳性能。硅膠柱上的分離并不完全是茶堿和咖啡因的基線分離。PEI 相的運行時間相對較長,因為樣品分子的位阻較大。表 2 為洗脫順序,這是通過測定的光譜和組分的單獨進樣來確定的。與其他相相比,硅膠顯示出不同的洗脫順序。對于氰基、2-EP 和 4-EP,不能完全確定洗脫順序。

 

色譜柱

洗脫順序

硅膠

茶堿,咖啡因,尿嘧啶,可可堿

氨基

咖啡因,茶堿,可可堿,尿嘧啶

氰基

咖啡因和茶堿的雙峰,可可堿,尿嘧啶

二醇

咖啡因,茶堿,可可堿,尿嘧啶

2-EP

咖啡因,茶堿,可可堿和尿嘧啶的雙峰

4-EP

咖啡因,茶堿,可可堿和尿嘧啶的雙峰

PEI

咖啡因,茶堿,可可堿,尿嘧啶

CBD

咖啡因,茶堿,可可堿,尿嘧啶

表2:SFC 不同色譜柱篩選條件下的洗脫順序

 

將開發方法通過 SFC-50 放大:

由于二醇基取得了最好的結果,因此選擇了 5μm, 250 x 10mm 的 PrepPure 二醇基進行 Sepiatec SFC-50 方法放大制備。由于通過堆疊注射法純化混合物的效率明顯高于多次梯度注射法,該方法是在等度運行條件下實施的,這是使用堆疊進樣的要求。在等度條件下,樣品只能在低甲醇含量下分離(見圖2,下)。在高甲醇濃度下,由于流動相的高洗脫強度,尿嘧啶、咖啡因、茶堿和茶堿是不可分離的(見圖2,上)。

 

圖2:使用 PrepPure Diol 5 μm, 250 x 10mm 色譜柱分離樣品。上:流速= 20 mL/min, 150 bar, 40℃,270nm, 33% B,進樣量= 0.09 mL,運行時間= 4 min;下:流量= 20 mL/min 150 bar 40°C, 270 nm, 12%甲醇,0.09 mL,運行時間= 5 min

 

改變壓力和溫度可以優化分辨率。最佳分離條件為 40℃ 和 150bar。

 

圖 3 為圖 2(下)實驗條件下的堆疊進樣情況,堆疊時間為 2.42min,因此每 2.42min 進樣一次。在這種情況下,由于每次額外注入節省了平衡時間,因此提高了產能。

 

為了更有效的多次分離,可以使用硅膠填料。使用 34% 的甲醇作為改性劑,將堆疊時間縮短至 2.15min。與二醇基相比,硅膠填料在 100bar 下表現出更好的性能。然而,在 1.5 的分辨率下,咖啡因和茶堿并不能獲得理想的基線分離。由于硅膠的極性比二元醇高,為了快速洗脫,必須增加改性劑的含量,但這也導致溶劑消耗增加。

 

4

結論

在本文中,使用 Sepmatix 8x SFC 進行柱篩選,并將開發結果轉移到 Sepiatec SFC-50 進行放大。在色譜參數分辨率和運行時間方面,二醇基表現出最好的效果。對于二醇基,根據篩選結果,在 Sepiatec SFC-50 儀器上采用 250 × 10 mm 柱進行等度堆疊進樣。作為比較,開發了另一種用于硅膠填料的方法,但分辨率值略差。

 

這種分離表明,要想在 prep-SFC 中獲得一個好的分離方法,事先通過柱篩選確定最佳選擇性是很重要的。然后,該方法可以在 prep-SFC 上簡單實現,并進行了優化。最理想的是,該方法在等度條件下應用,以最大限度地提高產量。

 

每次注射后的疊加紫外信號表明該方法具有良好的再現性(圖3和4,下面)。垂直線描述了收集相應分數的時間窗口。

 

3:堆疊進樣與二醇柱分離。流速= 20 mL/min, 150 bar, 40℃,270 nm, 12% B,進樣量= 0.12 mL;堆疊時間:2.42 min,注射次數:8次;上圖:最終色譜圖;下圖為各注射劑的紫外信號疊加圖

 

圖4:堆疊進樣與硅膠柱分離。流速= 16 mL/min, 100 bar, 40℃,270 nm, 34% B,進樣量= 0.09 mL;堆疊時間:2.15 min,注射次數:7次;上圖:最終色譜圖;下圖:分別在254 nm和270 nm處注射的疊加紫外信號

 

5

參考文獻

  1. https://doi.org/10.1093/chromsci/46.2.144

  2. DOI: 10.1021/jf030817m

  3. DOI: 10.1016/j.foodchem.2004.11.013

  4. DOI: 10.1016/j.saa.2004.03.030

  5. Laboratory Chromatography Gμide, ISBN 3-033-00339-7, by Büchi Labortechnik AG (Switzerland)

 

 

 

 

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