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5 min了解DNA磁珠的前世今生

來(lái)源:翌圣生物科技(上海)股份有限公司   2019年06月14日 14:36  

磁珠是高通量測(cè)序過(guò)程*產(chǎn)品,通過(guò)磁顆?;钚曰鶊F(tuán)在一定條件下可與核酸結(jié)合和解離的原理,將樣本中目的片段分離??蓪?shí)現(xiàn)對(duì)核酸樣本的高通量自動(dòng)化操作,廣泛應(yīng)用于基因測(cè)序以及分子診斷領(lǐng)域。

背景篇

磁珠的發(fā)明構(gòu)想初來(lái)自于挪威科技大學(xué)的化學(xué)家John Ugelstad,他在1976年以聚苯乙烯為主要材料,制作出均勻磁化的球體粒子。1979年Vogelstein等報(bào)道在高濃度典化鈉存在的條件下,玻璃粉末作為吸附劑用于從瓊脂糖凝膠中提取DNA片段,而后基于硅膠和其他具有親水性表面載體的固相核酸純化技術(shù)廣泛發(fā)展起來(lái)。而基于磁性微粒的核酸純化方法就是其中的一種。

結(jié)構(gòu)篇

雖然到目前為止納米級(jí)別的磁珠各式各樣,表面性質(zhì)不同,分離的原理也不盡相同,但其材料組成和基本的結(jié)構(gòu)并無(wú)太大的差異?;A(chǔ)結(jié)構(gòu)分為三層,內(nèi)層的是聚苯乙烯,第二層包裹磁性物質(zhì)(通常是Fe3O4),外層是修飾的官能團(tuán)(如羧基)。其中官能團(tuán)能與核酸結(jié)合,表面基團(tuán)不同,下游的應(yīng)用也不盡相同,如核酸提取,純化,生物素捕獲等。

 

圖 磁珠結(jié)構(gòu)示意圖

原理篇

商業(yè)化磁珠產(chǎn)品體系一般包含:磁珠、聚乙二醇(PEG)、鹽離子等。基于SPRI(Solid Phase Reversible Immobilization )技術(shù), DNA在一定濃度的PEG存在條件下,NaCl或MgCl2促進(jìn)條件下,DNA分子構(gòu)象會(huì)發(fā)生急劇變化,會(huì)暴露出磷酸骨架上大量的帶負(fù)電荷的磷酸基團(tuán),與表面帶負(fù)電荷的羧基磁珠結(jié)合。目前認(rèn)為這種負(fù)負(fù)電荷間的作用是由于帶正電荷的鹽離子的作用(如Na+)。帶負(fù)電磷酸基團(tuán)借由解離的鹽離子(如Na+)與羧基形成離子橋,使DNA被特異性吸附到羧基磁珠表面。利用磁珠的磁性,可通過(guò)外加磁場(chǎng)進(jìn)行收集洗脫。

 

圖 磁珠吸附DNA原理示意圖

操作篇

受益于高通量測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,磁珠也憑借其高通量,適用于自動(dòng)化的特點(diǎn)備受推崇,廣泛用于NGS文庫(kù)構(gòu)建中DNA純化/雙輪分選(片篩)。

DNA純化的目的在于去除不想要的片段,由于磁珠優(yōu)先吸附大片段,因而可通過(guò)一定比例的磁珠吸附特定大小以上的片段,丟棄上清(去除非目標(biāo)片段)后將磁珠吸附的DNA洗脫回收。常用于小片段如接頭二聚體/引物二聚體的去除。

 

DNA純化操作示意圖

DNA雙輪分選(片篩)目的在于從片段化DNA中選擇特定區(qū)域的DNA片段大小。由于磁珠優(yōu)先吸附大片段,因而需通過(guò)兩輪磁珠操作進(jìn)行分選。以分選450-550 bp的片段范圍為例:首先輪磁珠吸附550 bp以上片段,此時(shí)棄磁珠留上清,則上清中片段為550 bp以下的片段。第二輪取磁珠吸附450 bp以上(550 bp以下)磁珠,此時(shí)棄上清,再將磁珠上的目的片段洗脫回收。常用于NGS文庫(kù)構(gòu)建片段分選(片篩)。

 

DNA雙輪分選操作示意圖

結(jié)果分析篇

1. 磁珠回收效率

   DNA樣本經(jīng)磁珠純化后會(huì)有部分樣本的損失,磁珠回收效率可評(píng)估磁珠的回收能力。具體可通過(guò)計(jì)算得出:回收效率=(純化后的DNA質(zhì)量/Input DNA質(zhì)量)×100%。

   以下表為例,相同的比例條件下:測(cè)試人1測(cè)試A樣本回收效率=153.25/169.5=90.41%,同理可計(jì)算其他樣本的回收效率。

表 磁珠回收效率計(jì)算

測(cè)試人

樣本編號(hào)

投入量(ng)

純化后總量(ng)

回收率(%)

平均回收效率(%)

測(cè)試人1

(1.8×)

A

169.5

153.25

90.41

90.41

B

159.75

94.25

94.5

C

162

95.58

D

158.75

93.66

測(cè)試人2

(1.8×)

A

169.5

154.5

91.15

91.15

B

155

91.45

91.94

C

154.25

91

D

158.25

93.36

【注】:磁珠測(cè)試數(shù)據(jù)來(lái)源于上海某生物公司, 表格中A為AMPure XP磁珠;B、C、D分別是翊圣磁珠三個(gè)不同批次。

 

 

 

2. 磁珠分選精度

   由于二代測(cè)序段短讀長(zhǎng)的局限性,因而終的NGS文庫(kù)需滿足一定的長(zhǎng)度要求。因而NGS建庫(kù)中可能會(huì)分選特定長(zhǎng)度區(qū)間的片段,滿足上機(jī)需求。分選精度則是評(píng)估不同的磁珠投入比例分選得到的片段大小。一般以Agilent 2100儀器檢測(cè)。

   在特定磁珠比例(0.45×/0.15×)條件下,不同樣本分選后片段分布范圍集中在同一位置。較好的分選效果圖應(yīng)該是頂部窄而圓潤(rùn)的獨(dú)峰。

 

 

【注】:數(shù)據(jù)結(jié)果來(lái)源于上海某生物公司。值得注意的是:不同廠家磁珠buffer的不同,導(dǎo)致相同比例條件下分選得到的片段范圍也不一致,使用前請(qǐng)按照對(duì)應(yīng)的磁珠說(shuō)明書選擇合適的分選比例進(jìn)行操作。

 

注意事項(xiàng)篇

1. 磁珠使用前需平衡至室溫,否則影響實(shí)驗(yàn)效果(PEG分離效果易受pH、溫度等影響);

2. 用于磁珠洗脫的80%無(wú)水乙醇需現(xiàn)用現(xiàn)配;

3. 長(zhǎng)度分選時(shí)建議初始體積≥100 μL,不足時(shí)請(qǐng)用超純水補(bǔ)齊(樣品體積太小,將導(dǎo)致移液誤差增大,進(jìn)而影響分選的準(zhǔn)確性);

4. 磁珠分選時(shí)特別注意輪分選后棄含大片段的磁珠,第二輪棄含小片段的上清;

5. 輪分選轉(zhuǎn)移上清時(shí),避免吸到磁珠,引起大片段殘留;

6. 分選/純化產(chǎn)物如需長(zhǎng)時(shí)間存放請(qǐng)用TE buffer洗脫保存。

 

 

FAQ

看起來(lái)很簡(jiǎn)單的純化/分選實(shí)驗(yàn),卻在實(shí)際實(shí)驗(yàn)中有各種意外的情況。那關(guān)于產(chǎn)品選擇以及使用方面我們實(shí)際操作中有什么需要注意的事項(xiàng)呢?

產(chǎn)品應(yīng)用:

1. 磁珠可以吸附ssDNA嗎?

A:可以回收單鏈DNA,具體性能沒(méi)有測(cè)試過(guò)。附是Beckman磁珠回收單鏈DNA的數(shù)據(jù),可以作為參考。

 

2. 分選磁珠可以純化gDNA嗎?

A:翊圣分選磁珠測(cè)試過(guò)大20kb的片段,回收率>90%。基因組 DNA 未測(cè)試過(guò),測(cè)試時(shí),由于大DNA與磁珠結(jié)合的非常緊,建議盡量增加洗脫液體積,避免干燥時(shí)間過(guò)久。

3. 磁珠的DNA結(jié)合能力怎么樣?

A:在目前的磁珠體系中,磁珠的吸附能力均為過(guò)飽和,客戶不必?fù)?dān)心磁珠結(jié)合能力不足的情況。根據(jù)已知的報(bào)道,每1 μL磁珠可以結(jié)合7 μg DNA

4. 使用磁珠吸附小片段的時(shí)候,大片段也會(huì)吸附上來(lái)嗎?

A: 磁珠優(yōu)先吸附大片段,增大磁珠投入量時(shí),磁珠會(huì)在吸附大片段的基礎(chǔ)上增強(qiáng)吸附小片段的能力。舉例說(shuō)明:

參考磁珠純化分選表,100 μL樣本,加入80 μL磁珠Cat#12601,此時(shí)磁珠上吸附的是>350 bp的片段,但是,當(dāng)磁珠投入量至100 μL時(shí),磁珠上吸附的是>200 bp的片段。

產(chǎn)品使用效果:

1. 使用磁珠分選/純化之后,還有小片段殘留是怎么回事?

A: 小片段殘留大部分是接頭二聚體/引物二聚體。若純化,降低磁珠比例;若分選:可適當(dāng)降低二輪磁珠比例可有效改善此類情況。

2. 磁珠回收率低可能的原因是什么?

A:1)磁珠與DNA混勻不充分,未能充分吸附。建議反應(yīng)體系充分混勻;

2)磁珠比例不對(duì),建議按照說(shuō)明書進(jìn)行選擇合適的比例;

3)孵育時(shí)間不足,保證孵育時(shí)間至少5 min;

4)磁珠分選時(shí),二輪磁珠吸附的時(shí)候吸到磁珠。可在200 μL 槍頭前串聯(lián) 10μL槍頭用于移液,可防止吸到磁珠;

5)磁珠洗滌時(shí)的乙醇非現(xiàn)配,導(dǎo)致乙醇濃度過(guò)低,建議乙醇濃度不低于70%;

6)干燥過(guò)度:磁珠長(zhǎng)時(shí)間干燥導(dǎo)致表面龜裂,DNA難以洗脫,得率降低;建議干燥時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng),表面剛出現(xiàn)龜裂即可;

7)洗脫液體積不足:終洗脫液應(yīng)*覆蓋管內(nèi)磁珠。

產(chǎn)品儲(chǔ)存:

1. 磁珠不小心放在低溫(-20℃)凍了一段時(shí)間,還能用嗎?

A:不能使用,低溫會(huì)破壞磁珠表面集團(tuán)的修飾,影響磁珠回收性能。

 

 

 

 

關(guān)于我們

翊圣生物是專注于分子酶原料創(chuàng)新研發(fā)的高新技術(shù)企業(yè)。而磁珠是NGS文庫(kù)構(gòu)建*產(chǎn)品。根據(jù)市場(chǎng)磁珠需求,YEASEN集中專業(yè)人員,致力于磁珠系列產(chǎn)品的創(chuàng)新開發(fā),目前已經(jīng)擁有多款核酸純化類磁珠產(chǎn)品,可應(yīng)用于高通量測(cè)序與核酸純化。

 

圖 翊圣磁珠系列產(chǎn)品

磁珠產(chǎn)品選擇指南

產(chǎn)品

Hieff NGS® DNA Selection Beads

Hieff NGS® Smarter DNA Beads

Hieff NGS® cfDNA Clean Beads

貨號(hào)

12601

12600

12599

性能

替換AMPure XP

專注于小片段DNA回收

cfDNA純化,告別大片段污染

分選

250-850 bp范圍內(nèi)DNA分選

/

100-200 bp, 100-400 bp DNA分選

回收

>100 bp DNA 回收

>50 bp DNA回收

/

應(yīng)用

NGS文庫(kù)分選/純化

PCR產(chǎn)物純化(>200 bp

酶切連接產(chǎn)物純化(>200 bp

PCR產(chǎn)物純化(>50 bp)

酶切連接產(chǎn)物純化(>50 bp

cfDNA樣本純化

 

訂購(gòu)信息:

類型

名稱

貨號(hào)

規(guī)格

價(jià)格

替換XP 

Hieff NGS® DNA Selection Beads

12601ES08

5 mL

986.00

12601ES56

60 mL

6286.00

12601ES75

450 mL

26186.00

cfDNA純化

Hieff NGS® cfDNA Clean Beads

12599ES08

5 mL

1666.00

12599ES56

60 mL

9106.00

專注小片段回收

Hieff NGS® Smarter DNA Clean Beads

12600ES08

5 mL

1386.00

12600ES56

60 mL

7586.00

12600ES75

450 mL

29886.00

 

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