固定及常用的固定液
•   取材后的組織需立刻投于固定劑中
–   固定使組織和細胞的蛋白質(zhì)凝固，終止內(nèi)源性或外源性酶反應(yīng)，防止組織自溶或異溶，以保持原有結(jié)構(gòu)和形態(tài)；
–   對免疫組化而言更有原位保存抗原的作用，避免抗原失活或彌散。
•   常用固定液：固定劑品種很多，但大多屬于醛類和醇類。其固定原理不同，各有優(yōu)缺點。
–   醛類（常用甲醛、戊二醛和多聚甲醛）
–   醇類（常用乙醇）
–   其它 （丙酮）
(1) 醛類
•   甲醛(福爾馬林)應(yīng)用zui廣
–   原理：形成分子間的交聯(lián)，影響蛋白構(gòu)型而使之固定。
–   優(yōu)點：形態(tài)結(jié)構(gòu)保存好，且穿透性強，組織收縮少。
–   缺點：
•   甲醛放置過久可氧化為甲酸，使溶液pH降低，影響染色；
•   醛基與抗原蛋白的氨基交聯(lián)形成羧甲基，使抗原決定簇的三維構(gòu)象出現(xiàn)空間障礙；
•   分子間交聯(lián)形成的網(wǎng)格結(jié)構(gòu)可能部分或*掩蓋某些抗原決定簇，使之不能充分暴露。可造成假陰性的染色結(jié)果。
–   注意事項：
•   縮短固定時間，降低固定溫度(4?C)，為此組織塊不宜過厚。
•   改用中性緩沖福爾馬林，以pH值7.2～7.4 0.01mol/L的磷酸鹽緩沖液配制成10％甲醛固定液，減少固定液pH的變化。
•   固定后充分水洗以減少分子間交聯(lián)。
•   切片在作免疫組化染色前，先經(jīng)預(yù)處理使抗原再現(xiàn)(抗原修復(fù))。

•   戊二醛：
–   穿透性強，微細結(jié)構(gòu)保存好，但對抗原有一定影響，常與其他固定劑聯(lián)合用作免疫電鏡固定液。
•   多聚甲醛(常用4%)：
–   可用于免疫電鏡；也可用于免疫熒光染色。
•   主要檢測組織內(nèi)一些性能嬌弱的抗原特別是細胞表面抗原，例如各類淋巴細胸分化決定簇(CD)、主要組織相容性抗原等。
(2) 醇類
•   zui常用的醇類固定劑是乙醇。
–   其固定作用：使細胞內(nèi)蛋白、糖類發(fā)生沉淀。
–   優(yōu)點：穿透性強、抗原性保存好。
–   缺點：
•   脫水性強，易引起組織收縮、變硬，影響切片質(zhì)量，因而乙醇固定時間不宜過長(2h內(nèi))。
•   乙醇使蛋白變性的作用輕，固定后可再溶解；染色過程中，溫育時間長，抗原可流失而減弱反應(yīng)強度。
(3) 其它固定劑
•   丙酮：
–   對抗原性的保存好，但脫水性更強，較少 用于組織標本，但細胞爬片常用丙酮固定。

抗原修復(fù)——原因
•   常規(guī)的石蠟切片標本均用甲醛固定，結(jié)果使得：
–   抗原性物質(zhì)形成醛鍵、羧甲鍵而被封閉了部分抗原決定簇；
–   蛋白之間發(fā)生交聯(lián)而使抗原決定簇隱蔽。
•   要求：在染色時，需要先進行抗原修復(fù)或暴露，即將固定時分子之間所形成的交聯(lián)破壞，而恢復(fù)抗原的原有空間形態(tài)