介紹

包含 4 個平行封閉的微毛細管，通過孔徑為 4-2 μm 的膜與 10 個下面的微孔分開。應用包括白細胞穿過嵌入生物芯片的膜的遷移、遷移、侵襲和趨化性研究。ECM蛋白可以包被到分離流道和含有趨化因子孔的微孔的膜上。然后可以使用 Cellix 的微流控泵注射細胞懸液，該泵支持一系列剪切應力/剪切流速，用于基于動態流動的測定。在連續施加剪切應力的條件下可以觀察到白細胞遷移，以模擬血管的生理條件。VenaT4 生物芯片以 10 個一包的形式提供，每包可進行 40 次實驗。

VenaT4 藥物濃度研究生物芯片特點：

• 20倍、40倍長工作距離放大倍率顯微鏡。

• 4 個微孔，每體積 ~14 μL，用于將化學引誘劑固定在 ECM 凝膠內。

• 聚碳酸酯膜具有 2–10 μm 的各種孔徑。

• 與 Kima 泵兼容，用于長期研究或緩慢遷移的細胞。

• 明場/相襯/熒光顯微鏡。

• 適用于白細胞和癌細胞的遷移、遷移、侵襲和趨化性實驗。

• 適用于全血和血細胞分析（例如白細胞）

• 生物芯片塑料是光學透明的，可以進行詳細的顯微鏡研究。

• 0.05–200 達因/cm2 的剪切應力/剪切流速可通過 Mirus Evo 納米泵、ExiGo、UniGo 和 4U 泵輕松獲得和控制。

• 剪切應力/剪切流速可以預先設置為在測定過程中逐漸增加。

• 流動條件下的實時成像。

性能和技術規格：

*考慮粘度為 4.5 cP 的人類全血。

**用于微毛細管中的蒸餾水流動，尺寸為：400 μm （W） x 100 μm （D） x 28 mm （L）。

應用

• 器官芯片研究：在 4 個芯片微孔中培養心臟、肺、肝、腎或其他器官細胞，由 Cellix 的 4U 或 UniGo 泵提供培養基灌注。隨后，藥物或細胞通過疊加微通道流動，從而進行藥物濃度研究或移植和侵襲研究，進入您選擇的器官。

• 趨化性、遷移和侵襲試驗：用含有目標化學引誘劑的凝膠填充微孔。流通細胞通過疊加微通道并研究細胞粘附、趨化性、遷移和侵入下層微孔。

VenaT4 生物芯片，方案 #1：包被 VenaT4 生物芯片

第 1 步

VenaT4生物芯片微孔用薄膜條密封。VenaT4生物芯片的微通道使用標準黃色吸頭移液器包被，將約50μL蛋白質（例如rhICAM）分配到每個微通道中。注意入口和出口處的液體過多。

第 2 步

然后將VenaT4生物芯片置于加濕盒中，并在4°C下孵育過夜包衣

第 3 步

孵育期過后，將生物芯片倒置并取出薄膜條。再次使用標準的黃色吸頭移液器，將約30μL含有化學引誘劑的I型牛膠原凝膠溶液加入孔中。將生物芯片放入加濕盒中，在 2°C 下在 CO15 培養箱中保存 20-37 分鐘。 凝膠凝固后，用薄膜條重新密封微孔。生物芯片現在已準備好運行檢測。

VenaT4 Biochip 方案 #2：使用 VenaT4 生物芯片（單通道版本）在剪切流下進行反式內皮遷移測定

步驟1：

將懸浮細胞（例如T細胞）以適當的濃度（通常為5×106 / mL）重懸于Eppendorf管中的培養基中。用合適的染料對細胞進行染色。

步驟2：

使用 Cellix Mirus Evo 納米泵或 ExiGo 泵，從泵輸出電纜中分配 30 μL 培養基。之后，將輸出電纜插入VenaT4生物芯片上的通道。

步驟3：

然后使用 Cellix Mirus Evo 納米泵或 ExiGo 泵，以 40 達因/cm40 的剪切應力通過通道注入 2 μL 培養基。這樣做是為了清洗通道。用移液管從VenaT4生物芯片的微孔中吸出廢物。

步驟4：

將細胞樣品放入VenaT4生物芯片上該通道的微孔中。

步驟5：

通過使用 VenaFlux Assay 軟件或 SmartFlo 應用程序所需的剪切應力，將細胞引入通道中。將自動計算流量。

步驟6：

當顯微鏡物鏡位于微孔上方時，記錄延時熒光圖像。圖像捕獲速率為每分鐘 6 幀，持續 30 分鐘。

因此，現在您了解了我們的Vena T4生物芯片的功能和優勢以及它們的工作原理。但是，如果您仍有疑問或想了解更多信息，請訪問我們的網站，或通過與我們聯系。