產品介紹：

基因治療研究、藥物靶點高效篩選

 

德國進口Lonza Nucleofector 384孔高通量細胞核轉染系統（384-well Nucleofector System，原HT Nucleofector System，簡稱384孔核轉儀），具備Nucleofector技術快速處理、高轉染效率、高細胞活力的特點，每孔可設置不同的轉染程序，實現1~384樣品同時轉染，滿足CRISPR/Cas9基因編輯篩選、藥物靶點研究等高通量轉染的需求。



2021年是Lonza Nucleofector高效細胞核轉染技術面世20周年，作為非病毒轉染方法，大量成功用于原代細胞、干細胞、神經元、難轉染細胞系中，文獻引用超過10,000篇，多年來幫助推動基因治療研究、細胞治療研究、研究的發展。

Lonza 384孔核轉儀，作為獨立的轉染平臺，由一個轉染384孔板的工作模塊、一個提供高壓脈沖的電源模塊、一個用于設置轉染參數的PC端操作軟件組成，耗材使用配套384孔電轉板nucleocuvete plate（24×16），每孔為20μL體系，每一個孔可分別設置不同的轉染程序，1min內完成全部384個不同樣本的快速轉染，同時具備高轉染效率、高通量、高重復性的特點，廣泛應用于陣列cDNA、RNAi、CRISPR文庫篩選中，成為藥物靶點、疾病機理研究的高效研發工具。




 

Lonza 384孔核轉儀優勢

1、高效轉染——采用LonzaNucleofector細胞核轉染技術，通過針對每種細胞特殊優化的電轉染程序，大幅提升轉染效率，通過細胞特異性轉染液、無鋁離子毒害的新型聚合物電極，構建溫和轉染環境，提升轉染效率的同時，提高轉染后細胞活力，維持細胞功能完整。

2、高通量，快速處理——每1個孔均可設置特定轉染程序，可同時運行384個不同程序，實現真正的高通量轉染。1min內可完成1個384孔板的滿板轉染，可旋轉操作盤能夠處理2個384孔板，實現快速、規模化處理。



3、低成本——每孔轉染細胞數量2E4~1E6個，可用較低的細胞和耗材成本進行高通量的實驗優化。

4、線性放大規模——使用384孔核轉儀摸索的優化轉染條件，可直接用于Lonza其他大體積核轉儀模塊中，線性放大實驗成果。

5、自動化處理——384孔電轉板符合SBS標準，可無縫對接自動化液體處理系統，提高實驗整體效率，減少人為誤差。 



 
 

技術參數：

	尺寸	重量
工作模塊	40 cm × 42 cm × 15 cm (15.7 × 16.5 × 5.9 英寸)	10 kg (22.04 磅)
電源模塊	13.5 cm × 50 cm × 45 cm (5.3 × 19.6 × 17.7 英寸)	14 kg (30.86 磅)

產品應用：

參考文獻

1. Gordon, D., Hiatt, J., Bouhaddou, M. et al. Comparative host-coronavirus protein interaction networks reveal pan-viral disease mechanisms. Science, 370, 6521 (2020). /doi/10.1126/science.abe9403#F5

2. Mac Kain, A., Maarifi, G., Aicher, S. et al. 2021. Identification of DAXX As A Restriction Factor Of SARS-CoV-2 Through A CRISPR/Cas9 Screen. /content/10.1101/2021.05.06.442916v1.full

3. Obara, E.A.A., Aguilar-Morante, D., Rasmussen, R.D. et al. SPT6-driven error-free DNA repair safeguards genomic stability of glioblastoma cancer stem-like cells. Nat Commun 11, 4709 (2020). https://doi.org/10.1038/s41467-020-18549-8

4. Monkley, S., Overed-Sayer, C., Parfrey, H. et al. Sensitization of the UPR by loss of PPP1R15A promotes fibrosis and senescence in IPF. Sci Rep 11, 21584 (2021). https://doi.org/10.1038/s41598-021-00769-7

5. Tong, Y., J?rgensen, T.S., Whitford, C.M. et al. A versatile genetic engineering toolkit for E. coli based on CRISPR-prime editing. Nat Commun 12, 5206 (2021). https://doi.org/10.1038/s41467-021-25541-3

 

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