FITC-聚蔗糖（FITC-Ficoll®） 熒光素異硫氰酸酯-聚蔗糖
化學名：
聚蔗糖(3´,6´二羥基-3-氧代螺(異苯并呋喃-1(3H),9´-[9H]占噸]-5(或6)-基)氨基硫代甲酸酯]
熒光素異硫氰酸酯-聚蔗糖
結構：
特性
采用類似于de Belder和Granath1所述的方法，用熒光素對聚蔗糖組分進行標記。通過穩定的硫代氨基甲?；I連接基團與熒光素部分進行連接，標記步驟不會導致聚蔗糖發生任何降解。 FITC-polysucroses的DS在0.001-0.008之間，在該低水平范圍內，反應對聚蔗糖本身所帶來的變化被盡可能地減少了。
FITC-聚蔗糖以黃色粉末形式供應，其在水或鹽溶液中可以自由溶解，得到黃色溶液。該產品也溶于DMSO、甲酰胺等某些極性有機溶劑，但不溶于低脂肪醇、丙酮、Chloroform,CHCl3、二甲基甲酰胺。
聚蔗糖分子在溶液中顯示為球形分子，和結構預期結果一樣。在表2（下表）中，我們比較了葡聚糖和聚蔗糖組分的Stokes半徑，該數據反映了分子靈活性之間的差異。該分子可視作介于堅硬的固體圓球和柔性線團型鏈端之間的中間體。因此，在比較具有相似分子量的聚蔗糖和葡聚糖組分時，聚蔗糖的分子尺寸會小一些。與具有相同濃度的蔗糖溶液相比，聚蔗糖溶液具有非常低的滲透壓。例如，10％的聚蔗糖70溶液的滲透壓為3mOs / kg，而10％蔗糖的滲透壓為150。
目前還沒有任何關于FITC-聚蔗糖詳細毒性研究的報道。然而，在對實驗動物靜脈內施用12g / kg的聚蔗糖組分（100000-500000）后，未表現出任何毒性癥狀。聚蔗糖與細胞、病毒、微生物等之間具有良好的生物相容性，在細胞分離技術中已經應用了數十年。
Mw | 聚蔗糖Å | 葡聚糖Å |
|---|
2 x 106 | - | 270 |
1 x 106 | 140 | 199 |
500 000 | 106 | 147 |
200 000 | 74 | 95 |
100 000 | 55 | 69 |
70 000 | 49.5 | 58 |
40 000 | 40 | 44.5 |
10 000 | - | 23.6 |
表2. 聚蔗糖和葡聚糖的分子尺寸比較
光譜數據：
圖6. 在0.025M硼酸鹽pH9.0（9.9mg 鹽溶于50ml緩沖液中）中，FITC-聚蔗糖70的熒光掃描光譜。激發波長：496nm；發射波長：525 nm。在生物介質中進行測量可能會顯著影響熒光強度，其有可能會增強，也有可能會減弱。
儲存和穩定性：
在室溫、氣密容器中，FITC-聚蔗糖粉至少可以穩定儲存6年。關于FITC-聚葡萄糖在溶液中的穩定性尚未有任何詳細研究報道。然而，熒光素部分和聚蔗糖之間的硫代氨基甲酰基連接基團的穩定性類似于葡聚糖上連接基團（參見FITC-葡聚糖）的穩定性。 FITC-葡聚糖在高35℃的溫度、pH 4下可以保持穩定長達1個月，但由于蔗糖中糖苷鍵具有不穩定性，所以不推薦將該方案用于聚蔗糖基產品。聚蔗糖本身可以在中性和弱堿性pH下高壓滅菌。
FITC-聚蔗糖的應用：
關于兩種多糖（聚蔗糖（Ficoll®）和葡聚糖）在評估腎小球選擇性中與腎小球蛋白對比的可用數據已有綜述發表30。多分散多糖是測量腎小球選擇滲透性的優良探針，其具有可重現性、可靠性和性。作者闡述了可能會對結果產生影響的各種特性，如分子大小、形狀、電荷和靈活性，并評估它們在各種孔隙模型中的結果。靜脈輸注Ficoll腎小球滲透性的研究表明，其滲透性下限值在50Å左右，而葡聚糖預計值在60-70 Å，這一點可以由葡聚糖靈活性更大來解釋。人們還通過研究FITC-聚蔗糖在缺乏內皮細胞膜的小鼠中的清除率來闡明大分子運輸途徑31。還使用FITC-聚蔗糖70和400（即FITC-菊糖）32來在不同的腎小球濾過率下研究腎小球濾過作用。
對葡聚糖和Ficoll腎小球濾過作用的研究顯示，相比于葡聚糖，腎小球膜對Ficoll表現出更多的限制性屏障作用33。有趣的是，Ficoll篩分系數的值接近于不帶電球狀蛋白質的報道值。用FITC-聚蔗糖70/400監測手術和肌肉創傷后大鼠的腎小球篩分系數34。用FITC-聚蔗糖400（960μg）、FITC-聚蔗糖70（40μg）和FITC-菊糖（500μg）混合物作為初次推注給藥給大鼠。使用FITC-聚蔗糖70/400在小窩蛋白-1敲除小鼠中研究腎小球滲透性35。
通過對大鼠輸注FITC-聚蔗糖70和白蛋白來觀察溫度和氯化銨對清除率的影響。聚蔗糖的表現與葡聚糖不同，在20-70 Å范圍內較低36,37。使用FITC-聚蔗糖70來評價糖尿病9周后天然白蛋白清除率的增加是由于電荷選擇性降低還是大孔徑比例的變化而導致的。
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