詳細介紹
本公司所有產品僅供科學實驗,不做其他科學實驗外的使用!
商品屬性:
貨號 | GOY-SH112 | 檢測方法 | 微量法 |
規格 | 100管/48樣 | 產品類別 | 氧化磷酸化系列 |
測定意義:
Ca++ Mg++-ATP 酶廣泛分布于植物、動物、微生物和細胞中,可催化 ATP 水解生成 ADP 和無機磷。
測定原理:
根據 Ca++ Mg++-ATP 酶分解 ATP 生成 ADP 及無機磷,通過測定無機磷的量來確定 ATP 酶活性高低。
需自備的儀器及用品:
可見分光光度計/酶標儀、水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、微量石英比色皿/96 孔板、研缽、冰和蒸餾水。
試劑的組成和配制:
提取液:液體 100mL ×1 瓶,4℃保存。
試劑一:液體 10mL×1 瓶,4℃保存。
試劑二:粉劑×1 瓶,-20℃保存;臨用前加入 6mL 蒸餾水充分混勻待用;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復凍融。
試劑三:液體 2mL×1 瓶,4℃保存。
試劑四:粉劑×1 瓶,4℃保存。用時加入 3mL 蒸餾水, 4℃保存。
試劑五:粉劑×1 瓶, 4℃保存。用時加入 25mL 蒸餾水,溶解后 4℃保存一周。
試劑六:粉劑×1 瓶, 4℃保存。用時加入 25mL 蒸餾水,溶解后 4℃保存一周。
試劑七:液體 25mL×1 瓶,室溫保存。
試劑八:10mmol/L 標準磷貯備液 10mL×1 瓶,4℃保存。
0.5μmol/mL 標準磷應用液配制:將試劑八 20 倍稀釋,即取 0.1mL 試劑八加 1.9mL 蒸餾水充分混勻。
定磷劑的配制:按 H2O: 試劑五:試劑六:試劑七=2:1:1:1 的比例配制,配好的定磷劑應為淺黃色。若無色則試劑失效,若是藍色則為磷污染,定磷劑現用現配。
注意:配試劑最好用新的燒杯、玻棒和玻璃移液器,也可以用一次性塑料器皿,避免磷污染。
樣品酶液的制備:
1、細菌、細胞或組織樣品的制備:
細菌或培養細胞:先收集細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清;按照細菌或細胞數量(104個):提取液體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建議 500 萬細菌或細胞加入 1mL 提取液),超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率 20%或 200W,超聲 3s,間隔 10s,重復 30 次);8000g 4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。
組織:按照組織質量(g):提取液體積(mL)為 1:5~10 的比例(建議稱取約 0.1g 組織,
加入 1mL 提取液),進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。
2、血清(漿)樣品:直接檢測。
訂購流程:
1、訂購前,請與銷售員核對產品中文名稱/CAS號/英文名稱等。
2、我司大部分產品都是現貨,產品核實好下單后即可當天發貨。(庫存信息以當日為準)如有特殊要求請在發貨前與銷售員聯系。
3、我司產品支持款到發貨、快遞代收尾款、網上現拍等付款方式。
4、質量保證,嚴格把關,如有產品異議經公司鑒定確認后可包換包退,免除客戶后顧之憂。
5、我司提供完善的售后服務,使用過程中如有任何疑問,可提供技術指導。
測定步驟:
1、分光光度計或酶標儀預熱 30min 以上,調節波長至 660nm,蒸餾水調零。
2、酶促反應(在 EP 管中加入下列試劑)
對照管 測定管
試劑一(μL) 65 45
試劑二(μL) 60 60
試劑三(μL) 20
樣本 (μL) 100
混勻,37℃(哺乳動物)或 25℃(其他物種)準確水浴 10min
試劑四(μL) 25 25
樣本 (μL) 100混勻,8000g,25℃離心 10min,取上清液
3、定磷(在 EP 管或 96 孔板中加入下列試劑)空白管 標準管 對照管 測定管0.5μmol/ml 標準磷應用液(μL) 20
上清液(μL) 20 20
蒸餾水(μL) 20
定磷試劑(μL) 200 200 200 200
混勻,室溫放置 30min,在 660nm 處,記錄各管吸光值。
注意事項:
1、由于每一個樣都必須做對照,本試劑盒 100 管只能測 48 份 Ca++ Mg++-ATP 酶。
2、此法具有微量、靈敏、快速的特點。所以對測定所用試管要求嚴格無磷。避免磷污染是檢測成敗的關鍵。
3、空白管和標準管只要做一管。
Ca++ Mg++- ATPase 活力的計算:
1、血清(漿)Ca++ Mg++- ATPase 活力的計算:
定義:每小時每毫升血清(漿)中 Ca++ Mg++- ATP 酶分解 ATP 產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。
Ca++ Mg++-ATP 酶活力(μmol/h/mL)= [C 標準管×V 總]×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準管-A 空白管)÷V 樣÷T=7.5×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準管-A 空白管)
2、組織、細菌或細胞中 Ca++ Mg++- ATPase 活力的計算:
(1)按蛋白濃度計算:
定義:每小時每毫克組織蛋白中 Ca++ Mg++- ATP 酶分解 ATP 產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。
Ca++ Mg++-ATP 酶活力(μmol/h / mg prot)= [C 標準管×V 總]×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準管-A 空白管)÷(V 樣×Cpr)÷T =7.5×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準管-A 空白管)÷Cpr
(2)按樣本鮮重計算:
定義:每小時每克組織中 Ca++ Mg++
-ATP 酶分解 ATP 產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。
Ca++ Mg++-ATP 酶活力(μmol/h /g 鮮重)=[C 標準管×V 總]×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準管-A 空白管)÷(W× V 樣÷V 樣總)÷T=7.5×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準管-A 空白管)÷W
(3)按細菌或細胞密度計算:
定義:每小時每 1 萬個細菌或細胞中 Ca++ Mg++-ATP 酶分解 ATP 產生 1μmol 無機磷的量為
一個酶活力單位。
Ca++ Mg++-ATP 酶活力(μmol/h /104cell)= [C 標準管×V 總]×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準
管-A 空白管)÷(500×V 樣÷V 樣總)÷T=0.015×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準管-A 空白管)
C 標準管:標準管濃度,0.5μmol/mL;V 總:酶促反應總體積,0.25mL;V 樣:加入樣本體
積,0.1mL ;V 樣總:加入提取液體積,1mL;T:反應時間,1/6 小時;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL;W:樣本鮮重,g;500:細菌或細胞總數,500 萬。
生化試劑盒的使用注意事項:
選擇合適的試劑盒:根據實驗目的和檢測對象選擇合適的試劑盒,確保實驗的準確性和可靠性。
嚴格遵循說明書:按照試劑盒的說明書進行操作,避免誤用或浪費。
注意保存條件:按照試劑盒的保存條件進行妥善保存,避免陽光直射、高溫或潮濕等不利因素。
控制實驗條件:在實驗過程中嚴格控制實驗條件,如溫度、時間、pH值等,以確保實驗結果的穩定性。
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