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鏈霉親和素的突變體-瓊脂糖凝膠
1 、產品介紹
Strep-Tactin 2 NUPharose FF是鏈霉親和素的突變體(Strep-Tactin2配基)和瓊脂糖凝膠偶聯形成的和層析分離介質,用于分離、純化StrepII或Twin Strep標簽蛋白。Strep II標簽為8個氨基酸的小標簽(WSHPQFEK),一般不影響融合后蛋白質的結構和功能,常用于融合表達蛋白質的檢測和純化。Twin Strep標簽為兩個StrepII串聯的標簽,相比Strep II標簽,Twin Strep標簽與Strep-Tactin 2配基的親和力更高。
本產品的Strep-Tactin 2配基與上一代Strep-Tactin 配基相比,對Strep II標簽的親和力進一步提高,與生物-素的親和力大幅削弱。因而本產品能夠更牢固的結合Strep II融合蛋白,在融合蛋白表達豐度較低時,相對捕獲量更高,載量和得率更高。在洗脫方面,可以使用生物-素進行洗脫,比采用昂貴的脫硫生物-素洗脫更經濟,且使用后可采用10~50 mM NaOH進行再生。本產品對Strep II標簽具有高度特異性,一般只需一步純化就能獲得高純度的蛋白質樣品。
2 、產品特點與技術指標
產品名稱 | 鏈霉親和素的突變體-瓊脂糖凝膠 |
基質 | 4%交聯瓊脂糖 |
配基 | Strep-Tactin 2 配基, ≥5 mg/ml |
粒徑范圍 a | 45~ 165 μm |
平均粒徑 | ~90 μm |
動態結合載量 b | 8~ 10 mg/ml Strep II 標簽蛋白 |
推薦工作流速 | 60~ 150 cm/h |
最大流速與壓力 | >900 cm/h ,0.3 MPa |
使用 pH | 6~ 10(推薦的工作 pH),10~50 mM NaOH(CIP 清洗) |
化學穩定性 | 在以下溶液中穩定:常用的水相緩沖液、8 mol/L 尿素等。 |
儲存與運輸 | 20%乙醇,2~8 ℃(儲存),2~30 ℃(運輸) |
注:a90%體積以上的微球在此粒徑范圍;bDBC10%測試條件為:10%流穿,大腸桿菌表達的帶Strap II 標簽的增強型綠色熒光蛋白,6 min 停留時間。
3 、Strep II 、Twin Strep 標簽親和層析
Strep-Tactin 2 NUPharose FF對Strep II、Twin Strep標簽蛋白的特異性結合以及純化過程如圖1和圖2所示。
4 、使用方法參考
4.1 色譜柱裝填
以下闡述與層析系統連接時,填料的色譜柱裝填方法。
(1)所有需要用到的材料的溫度要與色譜操作的溫度一樣,液體最好做脫氣處理。
(2)填料用量計算:通過沉降定量填料體積,需要的沉降填料體積=柱體積×壓縮比(也稱壓縮因子)。沉降體積是指填料在20%乙醇保存液中自然沉降完-全讀取的穩定體積。Strep-Tactin 2 NUPharose FF的壓縮比為1.15 。為使達到裝柱比,可通過柱頭下壓的方法,也可以通過高流速壓柱。
(3)填料清洗:將填料懸液充分搖勻后量取相應體積,抽濾除去液體,并用約3倍填料體積的純化水洗滌,重復3次,以除去保存液。
(4)裝柱填料懸液準備:將填料轉移到適當的容器中,加入適量的裝柱液,制成50~75 v%的裝柱填料懸液,使用前攪勻。
(5)裝填前準備:在清洗干凈的層析柱下端加入裝柱液,以除去下墊片及層析柱下端的空氣,在柱內保留少量的蒸餾水,擰緊下堵頭,調整柱子使其垂直于地面。
(6)裝填:將攪勻后的填料懸液一次性緩慢倒入層析柱內(必要時使用裝柱器),為避免引入氣泡,應使之沿層析柱內壁自然流下。將所有填料加入后,用裝柱液將裝 柱器加滿,擰緊裝柱器上蓋,將柱子與層析系統連接。
(7)壓柱:使柱內填料自然沉降(或50~150 cm/h的低流速下沉降),待填料沉降完-全后(填料與液體的界面清晰),去除裝柱器,裝上上柱頭,并將柱頭下降至界面處;通過高流速(推薦流速見下表,注意柱壓不超過0.3 MPa),繼續壓柱至界面清晰 穩定,標記界面穩定時的柱高。停泵,打開柱頭上的閥門/堵頭,關閉柱底的閥門/堵 頭,下壓柱頭至標記位置下方與壓縮比對應的位置,旋緊柱頭,裝柱完成。裝柱完成后,需用高流速平衡柱內的填料。
裝柱條件 | Strap-Tactin 2 NUPharose FF |
壓縮比 | 1.15 |
裝柱流速 | 600 cm/h |
4.2 柱效測定和評價
完成裝柱后、使用前可通過柱效測定和評價可以確認層析柱裝填質量。柱效通常用理論塔板高度(HETP)和非對稱因子(As)來評價。
4.3 平衡與上樣(Equilibration & Loading)
Strep-Tactin 2 NUPharose FF填料的工作pH范圍為6~10,推薦下述緩沖液A為平衡與上樣緩沖液。樣品需作澄清處理,并用緩沖液A稀釋或者換液成緩沖液A。
緩沖液A:100mM Tris-HCl,150mM NaCl,1mM EDTA,pH8.0。平衡5個柱體積,建議流速為~150 cm/h上樣流速為50~150cm/h,較小的流速有利于載量的提高,可根據實際結合情況選擇流速,能獲得較好的效果。
4.4 再平衡
上樣后用緩沖液A再平衡5~10 CV,或平衡至基線,洗去雜質,推薦流速為~150cm/h。
4.5 洗脫(Elution)
推薦含10~50 mM的D-生物-素作為洗脫緩沖液,如下述的緩沖液B。
緩沖液B:50mM d-Biotin,100 mM Tris-HCl,150 mM NaCl,1 mM EDTA,pH8.0。 用洗脫緩沖液洗6-10 CV,建議流速為~150 cm/h。
4.6 再生(Regeneration)
在一次或多次使用后,需要對填料進行再生:水,3~5 CV,~150cm/h;10~50 mM NaOH,3 CV,3 min接觸時間;水,3~5 CV,~150 cm/h;再用緩沖液A平衡5~ 10 CV,150 cm/h。
4.7 填料保存
填料的初始保存液為20%乙醇,使用過后可繼續用20%乙醇保存。保存溫度在2~8 ℃為宜,不可凍存
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