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翌圣生物科技（上海）股份有限公司
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11202ES08實時熒光定量qPCR預混液(SYBR Green Mix)
| 參考價: | 面議 |
具體成交價以合同協(xié)議為準- 11202ES08 產(chǎn)品型號
- Yeasen/翌圣生物 品牌
- 生產(chǎn)商 廠商性質
- 上海市 所在地
訪問次數(shù)：2711更新時間：2024-09-04 16:51:56
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產(chǎn)品簡介
| 供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 5 x 1mL |
|---|---|---|---|
| 貨號 | 11202ES08 | 應用領域 | 醫(yī)療衛(wèi)生,化工,生物產(chǎn)業(yè) |
產(chǎn)品介紹
產(chǎn)品信息
產(chǎn)品名稱 | 產(chǎn)品編號 | 規(guī)格 | 儲存 | 價格（元） |
Hieff® qPCR SYBR Green Master Mix (Low Rox Plus) 實時熒光定量qPCR預混液(SYBR Green Mix) | 11202ES03 | 1 mL | -20℃避光 | 180.00 |
11202ES08 | 5×1 mL | -20℃避光 | 498.00 | |
11202ES50 | 50×1 mL | -20℃避光 | 7200.00 | |
11202ES60 | 100×1 mL | -20℃避光 | 12877.00 |
產(chǎn)品描述
Hieff® qPCR SYBR Green Master Mix實時熒光定量qPCR預混液(SYBR Green Mix)(Low Rox Plus)是2×實時定量PCR擴增的預混合溶液。Mix中含有熱啟動Hieff® DNA Polymerase、SYBR Green I、dNTPs、Mg2+及Low Rox。使用時，僅需在擴增體系中加入模板和引物即可進行實時熒光定量PCR，大大簡化操作過程，降低污染幾率。
本品采用的DNA聚合酶配體可以隨溫度變化實時調節(jié)DNA聚合酶活性。配方添加了有效抑制非特異性PCR擴增的因子和提升PCR反應擴增效率的因子，使定量PCR可以在寬廣的定量區(qū)域內獲得良好的線性關系。
適用機型
Applied Biosystems: 7500, 7500 Fast, ViiA7, QuantStudio Dx, QuantStudio3 and 5, QuantStudio 6,7,12k Flex;
Stratagene: MX3000P, MX3005P, MX4000.
運輸與保存方式
冰袋運輸。-20℃避光儲存，有效期18個月。
本品避免反復凍融。產(chǎn)品中含有熒光染料SYBR Green I，保存或配制反應體系時需避免強光照射。
注意事項
1. 推薦使用本公司cDNA合成試劑盒（貨號：11123ES），以有效去除RNA樣品中殘留的基因組。
2. 解凍后Master Mix可能出現(xiàn)絮狀物質，4℃放置并上下顛倒混勻至溶液澄清，不影響試劑性能。
3. 為了您的安全和健康，請穿實驗服并佩戴一次性手套操作。
4.本產(chǎn)品僅作科研用途！
反應體系（推薦冰上配制）
組分 | 體積（μl） | 體積（μl） | 終濃度 |
Hieff® qPCR SYBR Green Master Mix (Low Rox Plus) | 25 | 10 | 1× |
Forward Primer (10μM) | 1 | 0.4 | 0.2μM |
Reverse Primer (10μM) | 1 | 0.4 | 0.2μM |
模板DNA | X | X | - |
無菌超純水 | to 50 | to 20 | - |
【注】： 使用前務必充分混勻，避免劇烈震蕩產(chǎn)生過多氣泡。
a) 引物濃度：通常引物終濃度為0.2μM，也可以根據(jù)情況在0.1-1.0μM之間進行調整。
b) 模板濃度：如模板類型為未稀釋cDNA原液，使用體積不應超過qPCR反應總體積的1/10。
c) 模板稀釋：cDNA原液建議5-10倍稀釋，最佳模板加入量以擴增得到的CT值在20-30個循環(huán)為好。
d) 反應體系：推薦使用20μl或50μl，以保證目的基因擴增的有效性和重復性。
e) 體系配制：請于超凈工作臺內配制，并使用無核酸酶殘留的槍頭、反應管；推薦使用帶濾芯的槍頭。避免交叉污染和氣溶膠污染。
擴增程序（兩步法） 擴增程序（三步法）
循環(huán)步驟 | 溫度 | 時間 | 循環(huán)數(shù) | 循環(huán)步驟 | 溫度 | 時間 | 循環(huán)數(shù) | |
預變性 | 95℃ | 5min | 1 | 預變性 | 95℃ | 5min | 1 | |
變性 | 95℃ | 10sec | 40 | 變性 | 95℃ | 10sec | 40 | |
退火/延伸 | 60℃ | 30sec★ | 退火 | 55-60℃ | 20sec | |||
延伸 | 72℃ | 20sec★ | ||||||
熔解曲線階段 | 儀器默認設置 | 1 | 熔解曲線階段 | 儀器默認設置 | 1 | |||
【注】高特異性可選擇兩步法，高效率擴增可選擇三步法。
a) 預變性時間：根據(jù)不同模板和引物的具體情況可適當縮短至2min。
b) 退火溫度和時間：請根據(jù)引物和目的基因的長度進行調整。
c) 熒光信號采集（★）：請按照儀器使用說明書要求進行實驗程序設置，幾種常見儀器的時間設定如下：
30sec以上：Applied Biosystems: StepOne, StepOne Plus, 7500 Fast；Roche Applied Science: LightCycler 480；Bio-Rad: CFX96
31sec以上：Applied Biosystems: 7300
34sec以上：Applied Biosystems: 7500
d) 熔解曲線：通常情況下可以使用儀器默認程序。
結果分析
定量實驗至少需要三個生物學重復。反應結束后需要確認擴增曲線及熔解曲線。
1) 擴增曲線：標準擴增曲線為S型。
Ct值落在20-30之間時，定量分析最準確；
Ct值小于10，需要將稀釋模板后，重新進行實驗；
Ct值介于30-35之間時，需要提高模板濃度，或者增大反應體系的體積，以提高擴增效率，保證結果分析的準確性；
Ct值大于35時，檢測結果無法定量分析基因的表達量，但可用于定性分析。
2) 熔解曲線：
熔解曲線單峰，表明反應特異性好可以進行定量結果分析；若熔解曲線出現(xiàn)雙峰或者多峰，則不能進行定量分析。
熔解曲線出現(xiàn)雙峰，需要通過DNA瓊脂糖凝膠電泳判斷非目標峰是引物二聚體還是非特異性擴增。
如果是引物二聚體，建議降低引物濃度，或者重新設計擴增效率高的引物。
如果是非特異性擴增，請?zhí)岣咄嘶饻囟龋蛘咧匦略O計更高特異性的引物。
引物設計指南
1. 推薦引物長度25bp左右。擴增產(chǎn)物長度150bp為佳，可以在100bp-300bp內選擇。
2. 正向引物和反向引物的Tm值相差不宜超過2℃。引物Tm值60℃-65℃為佳。
3. 引物堿基分布要均勻，避免出現(xiàn)連續(xù)的4個相同堿基，GC含量控制在50%左右。3’端最后一個堿基最好為G或C。
4. 引物內部或者正反兩條引物間最好避免出現(xiàn)有3個堿基以上的互補序列。
5. 引物特異性需要用NCBI BLAST程序進行核對。避免引物3’端有2個堿基以上的非特異性互補。
6. 設計完成的引物需要進行擴增效率的檢測，只有具備相同擴增效率的引物才可用于定量比較分析。
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產(chǎn)品名稱 | 貨號 | 規(guī)格 |
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