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20503ES10His標(biāo)簽蛋白瓊脂糖高速純化樹脂
| 參考價(jià): | 面議 |
具體成交價(jià)以合同協(xié)議為準(zhǔn)- 20503ES10 產(chǎn)品型號(hào)
- Yeasen/翌圣生物 品牌
- 生產(chǎn)商 廠商性質(zhì)
- 上海市 所在地
訪問次數(shù)：2358更新時(shí)間：2019-12-20 17:11:32
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產(chǎn)品簡(jiǎn)介
| 供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 10 mL |
|---|---|---|---|
| 貨號(hào) | 20503ES10 | 應(yīng)用領(lǐng)域 | 生物產(chǎn)業(yè) |
產(chǎn)品介紹
HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF
His標(biāo)簽蛋白瓊脂糖高速純化樹脂
產(chǎn)品信息
產(chǎn)品名稱 | 產(chǎn)品編號(hào) | 規(guī)格 | 儲(chǔ)存 | 價(jià)格（元） |
HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF（His標(biāo)簽蛋白瓊脂糖高速純化樹脂） | 20503ES10 | 10 mL | 4℃ | 798.00 |
HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF（His標(biāo)簽蛋白瓊脂糖高速純化樹脂） | 20503ES50 | 50 mL | 4℃ | 3358.00 |
HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF（His標(biāo)簽蛋白瓊脂糖高速純化樹脂） | 20503ES60 | 100 mL | 4℃ | 5838.00 |
HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF（His標(biāo)簽蛋白瓊脂糖高速純化樹脂） | 20503ES60 | 1000 mL | 4℃ | 44686.00 |
產(chǎn)品描述
HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF以高度交聯(lián)的6%瓊脂糖凝膠為基質(zhì)，通過化學(xué)方法偶聯(lián)四配位的氮川三乙酸（NTA）為配體，螯合鎳離子（Ni2+）后，形成非常穩(wěn)定的八面體結(jié)構(gòu)，鎳離子處于八面體的中心，這樣的結(jié)構(gòu)可保護(hù)鎳離子免受小分子的進(jìn)攻，更加穩(wěn)定，可以耐受一定濃度的還原劑、變性劑或耦合劑等苛刻條件。此外，因其基質(zhì)的耐壓性（可耐受zui高0.3 MPa的壓力），該產(chǎn)品可以用于工業(yè)大規(guī)模蛋白的純化，可在相對(duì)較高的流速下，實(shí)現(xiàn)對(duì)目的蛋白的純化。
產(chǎn)品性質(zhì)
基質(zhì)（Matrix） | 高度交聯(lián)的6%瓊脂糖凝膠 |
粒徑（Bead size） | 45-165 µm |
載量（Capacity） | ＞40 mg 6×His-tagged protein/mL基質(zhì) |
耐壓（Tolerance Pressuremax） | 0.3 MPa，3 bar |
儲(chǔ)存緩沖液（Buffer） | 含20%乙醇的1×PBS |
運(yùn)輸和保存方法
冰袋運(yùn)輸。4℃保存。有效期2年。
注意事項(xiàng)
為了您的安全和健康，請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。
使用方法
一、純化流程
1 緩沖液的準(zhǔn)備
緩沖液使用原理：低咪唑上樣，高咪唑洗脫，或者高pH上樣，低pH洗脫。Buffer 在使用前用0.22 µm或0.45 µm濾膜過濾除菌。可溶性組氨酸標(biāo)簽蛋白純化所需配方詳見附表2。包涵體組氨酸標(biāo)簽蛋白純化所需緩沖液及配方詳見附表3。
2 樣品準(zhǔn)備
2.1 細(xì)菌表達(dá)的蛋白（本說明以細(xì)菌表達(dá)的蛋白純化為例）
1）挑取單菌落到含有適合抗性的LB培養(yǎng)基中，根據(jù)載體說明加入相應(yīng)的誘導(dǎo)劑誘導(dǎo)相應(yīng)的時(shí)間。
2）表達(dá)結(jié)束后，將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)至離心瓶，7000 rpm，離心15 min，收集菌體，然后加入1/10體積的裂解液（Lysis buffer）和PMSF（PMSF在破碎前加入，其終濃度為1 mM），同時(shí)也可加入其他蛋白酶抑制劑，但不能影響目的蛋白與樹脂的結(jié)合。
3）之后加入溶菌酶，使其工作濃度為1 mg/mL。【注】如果表達(dá)的宿主細(xì)胞內(nèi)含pLysS或pLysE，可以不加入溶菌酶。
4）將菌體沉淀懸浮起來（如果菌液濃度高，可考慮加入10 µg/mL RNase A和5 µg/mL DNase I），混勻，置于冰上超聲破碎細(xì)胞，至菌液基本保持澄清。
5）收集上述澄清蛋白液至離心管中，10000 rpm，4℃離心20-30 min。取上清，置于冰上備用或-20℃保存。
2.2 酵母、昆蟲和哺乳細(xì)胞分泌表達(dá)的可溶性蛋白
將細(xì)胞培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移至離心瓶，5000 rpm離心10 min，收集上清。如上清中不含EDTA、組氨酸和還原劑等，即可直接上柱純化；如含有EDTA、組氨酸和還原劑等物質(zhì)，則需用1×PBS 4℃下透析后方可上柱。
【注】對(duì)于大量體積的上清，需加入硫酸銨進(jìn)行沉淀濃縮，之后經(jīng)1×PBS 4℃下透析后上柱。
2.3 包涵體蛋白純化（以細(xì)菌為例）
1）將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移至離心瓶，7000 rpm，離心15 min，收集菌體去上清。
2）按照菌體：裂解液=1:10（w/v）的比例將菌體充分懸浮，混勻，冰浴超聲破碎。
3）將破碎液轉(zhuǎn)移至離心管，10000 rpm，4℃離心20-30 min，去上清。可重復(fù)步驟2）和3）一次。
4）按照菌體：裂解液（含8M尿素）=1:10（w/v）的比例將包涵體充分懸浮。
5）變性條件下純化His標(biāo)簽蛋白純化。
3 裝柱
1）用去離子水沖洗層析柱底篩板與接頭，確保柱底篩板上無氣泡，關(guān)閉柱底出口，并在柱底部留出1-2 cm的去離子水。
2）將樹脂懸浮，小心地將漿液連續(xù)地倒入層析柱中。用玻璃棒沿著柱壁倒入漿液可減少氣泡的產(chǎn)生。
3）如果使用儲(chǔ)液器，應(yīng)立即在層析柱和儲(chǔ)液器中加滿水，將進(jìn)樣分配器放置于漿液表面，連接至泵上，避免在分配器或進(jìn)樣管中產(chǎn)生氣泡。
4）打開層析柱底部出口，開啟泵，使其在設(shè)定的流速下進(jìn)行。初應(yīng)讓緩沖液緩慢流過層析柱，然后緩慢增加至終流速，這樣可避免液壓對(duì)所形成柱床的沖擊，也可以避免柱床形成的不均勻。如達(dá)不到推薦的壓力或流速，可以用所用泵的大流速，這樣也可以達(dá)到一個(gè)較好的裝填效果。當(dāng)柱床高度穩(wěn)定后，在后的裝柱流速下至少再上3倍柱體積的去離子水。標(biāo)上柱床高度。【注】在隨后的色譜程序中，不要超過大裝柱流速的75%。
5）關(guān)閉泵，關(guān)閉層析柱出口。
6）如使用儲(chǔ)液器，去除儲(chǔ)液器，將分配器置于層析柱中。
7）將分配器推向柱子至標(biāo)記的柱床高度處。允許裝柱液進(jìn)入分配器，鎖緊分配器接頭。
8）將裝填好的層析柱連接至泵或色譜系統(tǒng)中，開始平衡。如需要可重新調(diào)整分配器。
4 樣品純化
裝柱后，可用各種常規(guī)的中壓色譜系統(tǒng)，以AKTA使用為例進(jìn)行說明：
1）將泵管道注滿去離子水。去掉產(chǎn)品上塞，連接至色譜系統(tǒng)中，打開下出口，將純化柱連接到色譜系統(tǒng)中，注意旋緊。
2）3-5倍柱體積去離子水沖洗純化柱。
3）至少5倍柱體積的Lysis Buffer 平衡色譜柱。1ml規(guī)格預(yù)裝柱推薦流速為1 mL/min，5 mL預(yù)裝柱推薦流速為5 mL/min。
4）利用泵或注射器上樣，收集流出液，以便SDS-PAGE檢測(cè)蛋白結(jié)合情況。【注】若樣品粘度增加，即使上樣體積很少也會(huì)導(dǎo)致層析柱很大反壓；上樣量不要超過柱子的結(jié)合能力；大量樣品體積也可能造成很大的反壓，使得進(jìn)樣器更難使用。
5）Wash Buffer 平衡柱子，直到紫外吸收達(dá)到一個(gè)穩(wěn)定的基線（一般至少10-15個(gè)柱體積）。
【注】在樣品和結(jié)合緩沖液中加入低濃度咪唑可以提高樣品純度。
6）Elution Buffer一步法或梯度法進(jìn)行洗脫。一步法洗脫中一般5倍柱體積洗脫液即可。梯度洗脫可以用一個(gè)小的梯度，例如20倍柱體積或更多來分離不同結(jié)合強(qiáng)度的蛋白質(zhì)。
7）建議用更高濃度咪唑（如500 mM）*清洗純化柱上結(jié)合的雜蛋白。隨后依次用3倍柱體積的Lysis Buffer和5倍柱體積的去離子水清洗樹脂。5倍柱體積的20%乙醇平衡樹脂，后將樹脂保存在20%乙醇的1×PBS中，置于4℃保存。
5 SDS-PAGE檢測(cè)
將純化過程中得到的樣品（包括原始樣品、流出組分、洗雜及洗脫組分等）利用SDS-PAGE進(jìn)行檢測(cè)，判定其純化效果。
二、在位清洗
當(dāng)填料使用過程中發(fā)現(xiàn)反壓過高（>0.5 Mpa）或者填料上面出現(xiàn)明顯的污染時(shí)，需對(duì)其進(jìn)行在位清洗（Cleaning-in-Place，CIP）。在位清洗時(shí)，先把Ni2+脫掉，清洗結(jié)束后，將填料保存在20%乙醇中，后者重新掛Ni后再保存在20%乙醇中。建議按照下面操作去除填料上殘留的污染物，如沉淀蛋白、疏水蛋白和脂蛋白等。
1 去除強(qiáng)疏水結(jié)合的蛋白，脂蛋白和脂類
使用30%異丙醇清洗5-10個(gè)柱體積，接觸時(shí)間為15-20 min可以去除此類污染物。之后再用去離子水清洗10倍柱體積。也可以選擇使用含有去污劑的酸性或者堿性溶液清洗填料2倍柱體積。例如含有0.1-0.5%非離子去污劑的0.1 M醋酸溶液，接觸時(shí)間為1-2 h。去污劑處理后，需用70%的乙醇清洗5倍柱體積，*去除去污劑。后利用去離子水清洗10倍柱體積。
2 去除離子作用結(jié)合的蛋白
使用1.5 M NaCl 溶液接觸10-15 min，之后用去離子水清洗10倍柱體積。
三、填料再生
當(dāng)填料使用過程中發(fā)現(xiàn)反壓過高（>0.5 Mpa），填料上面出現(xiàn)明顯的污染，或填料載量明顯變低時(shí)，需要對(duì)其進(jìn)行鎳離子剝離及重新掛鎳處理，即填料再生。按照下面操作流程進(jìn)行：
1）使用5倍柱體積去離子水清洗填料；
2）使用5倍柱體積100mM EDTA（pH 8.0）剝落鎳離子；
3）使用10倍柱體積去離子水清洗填料；
4）使用0.5M NaOH清洗5倍柱體積，停留10-15min；
5）使用10倍柱體積去離子水清洗填料；
6）使用3-5倍柱體積100mM NiSO4再生掛鎳；
7）去離子水清洗10倍柱體積。
填料再生后，可立即使用，也可保存在20%乙醇中，置于4℃?zhèn)溆谩?/span>
相關(guān)產(chǎn)品
20502ES10 | HisSep Ni-NTA Agarose Resin （His標(biāo)簽蛋白瓊脂糖純化樹脂） | 10 mL |
20502ES50 | HisSep Ni-NTA Agarose Resin （His標(biāo)簽蛋白瓊脂糖純化樹脂） | 50 mL |
20502ES60 | HisSep Ni-NTA Agarose Resin （His標(biāo)簽蛋白瓊脂糖純化樹脂） | 100 mL |
20504ES08 | HisSep Ni-NTA 6FF Chromatography Column, 5ML（His標(biāo)簽蛋白純化預(yù)裝柱，5ML） | 5 mL |
20504ES25 | HisSep Ni-NTA 6FF Chromatography Column, 5ML（His標(biāo)簽蛋白純化預(yù)裝柱，5ML） | 5×5 mL |
20505ES03 | HisSep Ni-NTA 6FF Chromatography Column, 1ML（His標(biāo)簽蛋白純化預(yù)裝柱，1ML） | 1 mL |
20505ES08 | HisSep Ni-NTA 6FF Chromatography Column, 1ML（His標(biāo)簽蛋白純化預(yù)裝柱，1ML） | 5×1 mL |
附表1 HisSep Ni-NTA Agarose Resin試劑耐受情況
試劑種類 | 濃度 |
還原劑 | 5 mM DTE 0.5-1 mM DTT 20 mM β-mercaptoethanol 5 mM TCEP 10 mM reduced glutathione |
變性劑 | 8 M urea 6 M Gua-HCl |
去污劑 | 2% TritonTM X-100，nonionic 2% TweenTM20，nonionic 2% NP-40，nonionic 2% Cholate，anionic 1% CHAPS，zwitterionic |
其他類 | 500 mM imidazole 20% ethanol 50% glycerol 100 mM Na2SO4 1.5 M NaCl 1 mM EDTA 60 mM citrate |
緩沖液 | 50 mM sodium phosphate，pH7.4 100 mM Tris-HCl，pH7.4 100 mM Tris-acetate，pH7.4 100 mM HEPES，pH7.4 100 mM MOPS，pH7.4 100 mM sodium acetate，pH7.4 |
附表2 可溶性His標(biāo)簽蛋白純化所需緩沖液及配方
緩沖液名稱 | 配方 | 配制1L溶液所需各種試劑量 |
Lysis Buffer，pH8.0 | 50 mM NaH2PO4 300 mM NaCl 10 mM imidazole NaOH調(diào)pH至8.0，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | NaH2PO4 ·2H2O 7.8 g NaCl 17.54 g Imidazole 0.68 g |
Wash Buffer，pH8.0 | 50 mM NaH2PO4 300 mM NaCl 20 mM imidazole NaOH調(diào)pH至8.0，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | NaH2PO4 ·2H2O 7.8 g NaCl 17.54 g Imidazole 1.36 g |
Elution Buffer，pH8.0 | 50 mM NaH2PO4 300 mM NaCl 250 mM imidazole NaOH調(diào)pH至8.0，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | NaH2PO4 ·2H2O 7.8 g NaCl 17.54 g Imidazole 17.0 g |
附表3 包涵體His標(biāo)簽蛋白純化所需緩沖液及配方
緩沖液名稱 | 配方 | 配制1L溶液所需各種試劑量 |
Lysis Buffer，pH8.0 | 8 M Urea 100 mM NaH2PO4 100 mM Tris·HCl 鹽酸溶液調(diào)pH至8.0，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | Urea 480.5 g NaH2PO4 ·2H2O 15.6 g Tris 15.76 g |
Wash Buffer，pH6.3 | 8 M Urea 100 mM NaH2PO4 100 mM Tris·HCl 鹽酸溶液調(diào)pH至6.3，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | Urea 480.5 g NaH2PO4 ·2H2O 15.6 g Tris 15.76 g |
Elution Buffer，pH4.5 | 8 M Urea 100 mM NaH2PO4 100 mM Tris·HCl 鹽酸溶液調(diào)pH至4.5，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | Urea 480.5 g NaH2PO4 ·2H2O 15.6 g Tris 15.76 g |
附表4 問題及解決方案
問題 | 可能原因 | 推薦解決方案 |
柱子反壓過高 | 填料被堵塞 | 裂解液中可能含微小的固體顆粒，建議上柱前使用濾膜（0.22 µm或0.45 µm）過濾，或離心去除。 |
樣品中含高濃度的核酸，延長(zhǎng)破碎時(shí)間直至粘度降低，或添加DNaseI （終濃度為5 µg/mL），Mg2+(終濃度1 mM)，冰上孵育10-15 min | ||
樣品太黏稠 | 有機(jī)試劑或蛋白穩(wěn)定試劑（如甘油等）可能會(huì)引起反壓增高，降低操作流速。 | |
洗脫組分中無目的蛋白 | 蛋白可能是包涵體 | 可通過電泳檢測(cè)裂解液，分析上清中是否有目的蛋白，包涵體蛋白需按照包涵體蛋白的純化方式 |
表達(dá)量太低 | 優(yōu)化表達(dá)條件，使用包涵體純化緩沖體系 | |
目的蛋白結(jié)合比較弱，在洗雜步驟中已被洗下來 | 提高Wash Buffer的pH值，或者降低咪唑濃度 | |
目的蛋白結(jié)合過強(qiáng)，不容易洗脫下來 | 降低Elution Buffer 的pH，或者增加Elution Buffer中的咪唑濃度 | |
使用10-100 mM EDTA溶液剝離鎳離子，同時(shí)得到蛋白 | ||
蛋白降解 | 菌體破碎時(shí)需添加一些蛋白酶抑制劑 | |
在4℃下進(jìn)行純化操作 | ||
洗脫組分不純（含多種蛋白） | 洗雜不* | 增加Wash Buffer 體積 |
樣品中含有其他His標(biāo)簽蛋白 | 通過調(diào)節(jié)pH值或咪唑濃度來優(yōu)化洗雜條件。再使用其他純化手段（如去離子交換，疏水等）進(jìn)一步純化洗脫組分。 | |
填料顏色變淺或變成白色 | 鎳離子脫落或者剝離 | 按照填料再生的操作重新掛鎳離子 |
填料呈現(xiàn)褐色 | 緩沖液中含有DTT等還原劑 | 參考附3適當(dāng)降低還原劑DTT的濃度，或改用巰基乙醇 |
上樣過程中蛋白發(fā)生沉淀 | 操作溫度太低 | 室溫下進(jìn)行上樣 |
蛋白發(fā)生聚集 | 在樣品和所有緩沖液中添加穩(wěn)定劑，如0.1%Triton X-100或Tween-20 |
HB191216
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