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間充質干細胞成脂誘導分化試劑盒
,成脂誘導液
貨號:YJ-MSCYD-004
價格: 1280.0
規格: 100ml 200ml
產品描述
本產品為團隊精心優化的間充質干細胞成脂誘導分化試劑盒,可增強間充質干細胞向成脂細胞分化的能力。
本產品僅用于科研用途,不可用于診斷、治療、臨床、家庭及其他用途。
產品組成成分及保存
試劑名稱 | 體積(100mL規格/200mL規格) | 保存條件及有效期 |
誘導分化添加劑Ⅰ | 5mL / 10mL | -20℃,1 Year |
誘導分化添加劑Ⅱ | 0.1mL / 0.2mL | -20℃,1 Year |
優質胎牛血清 | 10mL / 20mL | -20℃,1 Year |
細胞基礎培養基 | 85mL / 170mL | 4℃,1 Year |
油紅O染色液 | 5mL / 10mL | 4℃避光,1 Year |
注意:
1.為保證產品的有效性,請避免反復凍融。
2.配制好的誘導培養基保存于2-8℃,有效期為2周,請根據實驗用量合理配制。
產品使用說明
1. 成脂誘導分化完全培養基的配制
①室溫條件下融化各因子及血清。各因子融化后,瞬時離心,使溶液集中于離心管底部。(注意:若因子或血清中有沉淀物,屬正常現象,無須過濾,避免成分丟失。)
②根據實驗用量,于無菌操作臺中配制誘導分化完全培養基,建議每次配制50mL,配制比例見下表:
試劑成分 | 配制比例 | 50mL配制體系 |
誘導分化添加劑Ⅰ | 5% | 2.5mL |
誘導分化添加劑Ⅱ | 0.1% | 50uL |
優質胎牛血清 | 10% | 5mL |
細胞基礎培養基 | 85% | 42.5mL |
2. 成脂誘導分化實驗步驟
①建議取第3~5代、純度達90%以上、狀態良好的間充質干細胞,將其消化下來,離心收集,使用含10%FBS的完全培養基調整細胞密度,均勻鋪于培養瓶/板中,置于37℃5%CO2,飽和濕度的培養箱中培養。(細胞接種詳情參考表二)
培養器皿 | 底面積 | 細胞量 | 培養液體積 |
24孔培養板 | 2cm/孔 | 2×105cell/孔 | 1mL/孔 |
12孔培養板 | 4.5cm/孔 | 4.5×105cell/孔 | 2mL/孔 |
6孔培養板 | 9.6cm/孔 | 9.6×105cell/孔 | 2mL/孔 |
T25培養瓶 | 25cm | 25×105cell | 5mL |
6cm培養皿 | 21cm | 21×105cell | 5mL |
10cm培養皿 | 55cm | 55×105cell | 10mL |
表二
②待細胞匯合度達80%~100%時,即可進行誘導分化。
③小心吸棄細胞培養上清,沿孔壁緩慢加入提前配制好的誘導分化完全培養基,置于37℃恒溫細胞培養箱中培養。(注意:完全培養基加入細胞前需提前置于37℃預熱。)
④每2~3day換用新鮮的誘導分化完全培養基。換液時,若細胞培養上清顏色變為澄清的黃色,是由于細胞量較大,培養基消耗較快導致的,請及時縮短換液周期。(注意:完全培養基加入前需提前置于37℃預熱。)
⑤細胞誘導3周后,即可進行油紅O染色鑒定。
3. 油紅染色分析
①細胞誘導分化結束后,小心吸棄細胞培養上清,1×PBS潤洗1~2次。加入適量細胞固定液,室溫固定30 min。(細胞固定液為4%中性甲醛溶液等,體積參考表二)
②配制油紅O工作液:油紅O貯存液與蒸餾水按照3:2配制,(例:油紅O貯存液3mL,蒸餾水2mL),混勻。使用濾紙過濾,收集濾液,即為油紅O工作液。(注意:成脂細胞內的油滴極易脫落,操作時須謹慎。)
③細胞固定完成后,吸棄細胞固定液,1×PBS潤洗2次。沿孔壁緩慢加入適量油紅O工作液,室溫染色30min。(注意:油紅O工作液底部可能會有沉淀,吸取時盡量不要觸及底部。若細胞染色后有沉淀,PBS洗去即可。)
④吸出染色液,PBS潤洗,去掉浮色。顯微鏡下觀察細胞染色效果。細胞內油滴著色,呈紅色。(注意:油紅O工作液不可重復使用,不建議回收。)
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