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Cell:SP8 STED 納米顯微鏡對(duì)人瘧疾感染初期關(guān)鍵蛋白的鑒定

閱讀:1287      發(fā)布時(shí)間:2018-10-9
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瘧疾是一種威脅生命的疾病,通過被原生動(dòng)物寄生蟲感染的蚊子叮咬傳播。常見和危險(xiǎn)的瘧疾類型是惡性瘧原蟲(Plasmodium falciparum)引起的瘧疾。瘧疾引起了嚴(yán)重關(guān)切,因?yàn)槭澜缟嫌幸话氲娜丝谔幱谶@種危險(xiǎn)之中,而且迄今為止還沒有有效疫苗。2016年,世界衛(wèi)生組織報(bào)告了2.16億例[1],其中50萬人死亡,由瘧疾造成的經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)超過了數(shù)十億美元。

 

 

 

圖1. 瘧原蟲對(duì)紅細(xì)胞的侵襲示意圖

 

在細(xì)胞水平,惡性瘧原蟲對(duì)紅細(xì)胞的感染引發(fā)了該疾病的臨床癥狀。該階段涉及高度動(dòng)態(tài)的蛋白質(zhì)間的相互作用,由于它們的復(fù)雜性,目前仍然知之甚少。澳大利亞墨爾本大學(xué)Cowman等利用SP8 STED納米顯微鏡和特定蛋白的條件表達(dá),確定了在入侵階段的關(guān)鍵蛋白復(fù)合物。形成復(fù)合物的蛋白質(zhì)能夠使宿主-病原體相連接,并且復(fù)合物的存在是宿主-病原體緊密連接和紅細(xì)胞Ca2+釋放所必需的(圖1)。這一突破發(fā)表在Cell Host&Microbe雜志上[2]。

 

 

 

 

 

 

瘧疾感染的主要參與者

 

圖2:瘧原蟲生命周期的三個(gè)主要階段:肝臟階段,血液階段和載體階段。綠色圓圈顯示寄生蟲從載體到宿主、從宿主到載體的關(guān)鍵入口點(diǎn)。圖片來源[3]。

進(jìn)入人類宿主后,隨著瘧疾的發(fā)展,瘧原寄生蟲在其生命周期中以不同的形式存在(圖2)。在所謂的血液階段[4],以裂殖子形式存在于紅細(xì)胞,通過不同階段進(jìn)化,感染的宿主細(xì)胞中會(huì)產(chǎn)生約30個(gè)子代裂殖子,并準(zhǔn)備入侵其他細(xì)胞。裂殖子入侵是寄生蟲在血流中傳播和疾病發(fā)作的關(guān)鍵。盡管如此,該疾病的分子機(jī)制尚不清楚。

為了侵入紅細(xì)胞,裂殖子必須首先與宿主細(xì)胞接觸,即所謂的“入侵前”階段[5],使紅細(xì)胞膜變形,裂殖子配體與膜中的特定受體結(jié)合,形成緊密連接,并觸發(fā)Ca2+流。Ca2+的流動(dòng)似乎對(duì)細(xì)胞侵襲很重要。寄生蟲與細(xì)胞的附著變得不可逆轉(zhuǎn),并在不到2分鐘內(nèi)進(jìn)入紅細(xì)胞。

惡性瘧原蟲紅細(xì)胞結(jié)合蛋白同源物(PfRh)和紅細(xì)胞結(jié)合類蛋白是參與入侵的重要信號(hào)[6]。PfRh家族的關(guān)鍵成員是PfRh5,其與宿主蛋白受體basigin結(jié)合可以誘導(dǎo)Ca2+釋放到紅細(xì)胞中,并標(biāo)志著裂殖子和血細(xì)胞膜的橋連通道的形成。PfRh5對(duì)于裂殖子侵入至關(guān)重要,正如抗體或可溶性basigin抑制紅細(xì)胞感染的研究所示[7]。PfRh5與PfRh5相互作用蛋白(PfRipr)和富含半胱氨酸的保護(hù)性抗原(CyRPA)一起發(fā)揮作用,但這種相互作用的功能尚不清楚。了解PfRh5/PfRipr/CyRPA的作用非常重要,因?yàn)檫@些蛋白質(zhì)是開發(fā)抑制血液中瘧疾發(fā)展的疫苗的重要候選者[8]。

 

用正確的工具尋找瘧疾感染的答案

 

視頻1 PfRipr缺失的裂殖子試圖感染紅細(xì)胞

 

 

Cowman等開展了轉(zhuǎn)基因惡性瘧原蟲系的研究工作,分別敲除PfRipr和CyRPA的基因,RiprloxCre和CyRPAloxCre[2]。在含有RiprloxCre和CyRPAloxCre基因的寄生蟲加入重組酶(雷帕霉素誘導(dǎo)的DiCre)以快速且非常有效地調(diào)節(jié)基因缺失,從而相應(yīng)地控制兩種蛋白質(zhì)水平。作者還進(jìn)行了活細(xì)胞成像,并確認(rèn)PfRipr和CyRPA在與宿主細(xì)胞初次接觸后對(duì)紅細(xì)胞侵襲至關(guān)重要。在沒有PfRipr或CyRPA的情況下,宿主細(xì)胞膜仍然變形,但缺乏Ca2+流動(dòng),因此寄生蟲不能進(jìn)入血細(xì)胞(視頻1)。

 

SP8 STED納米顯微鏡發(fā)現(xiàn)未知

 

接下來,Cowman等研究了入侵期間的PfRh5、PfRipr和CyRPA的定位[2]。共聚焦成像顯示三種蛋白質(zhì)在寄生蟲頂端優(yōu)先定位,該區(qū)域優(yōu)先與宿主細(xì)胞接觸。然而,對(duì)于生物分子的空間分布的評(píng)估只可能發(fā)生于低于顯微成像3/4衍射極限的分辨率水平上,2D通常低于30nm、3D STED(受激發(fā)射損耗)通常低于100nm。為此,將紅細(xì)胞與裂殖子一起孵育以誘導(dǎo)入侵并用抗體探針對(duì)靶蛋白進(jìn)行標(biāo)記。樣品被放置于Leica TCS SP8 STED納米顯微鏡上進(jìn)行2D和3D超高分辨成像(775nm,視頻2)。為了進(jìn)一步確定入侵的初始階段,研究人員還對(duì)RON4進(jìn)行了免疫熒光標(biāo)記,RON4是定位于寄生蟲頂端的蛋白質(zhì)(圖3)。

 

圖3:侵入紅細(xì)胞的裂殖子的STED納米檢測(cè)。3D STED圖像顯示RON4(品紅色)與蛋白質(zhì)PfRh5(上圖左,綠色)、PfRipr(中,綠色)、PfCyRPA(右,綠色)的疊加。DAPI核染色顯示為藍(lán)色,紅細(xì)胞膜顯示為灰色。比例尺為1μm。圖片由Walter和Eliza Hall醫(yī)學(xué)研究Alan Cowman教授。

 

視頻2 裂殖子入侵紅細(xì)胞早期的STED 3D構(gòu)建

 

用SP8 STED獲得的空間信息顯示PfRh5、PfRipr和CyRPA在寄生蟲頂端進(jìn)行共定位,其中也發(fā)現(xiàn)了RON4的存在(視頻2)。單個(gè)蛋白質(zhì)和PfRh5/PfRipr和CyRPA/PfRipr二聚體復(fù)合物在裂殖子膜上表現(xiàn)出拼接分布,與頂端末端的釋放一致。使用2D STED進(jìn)行更近、更高分辨率的成像證實(shí)PfRipr和CyRPA在裂殖子上擴(kuò)散,但特別局限于頂端。對(duì)PfRh5/PfRipr和CyRPA/PfRipr的共定位程度的評(píng)估顯示,PfRh5/PfRipr的比例更大。該發(fā)現(xiàn)表明CyRPA/PfRipr擴(kuò)散到裂殖子表面上,隨后PfRh5/CyRPA/PfRipR復(fù)合物直接在表面頂端聚集以結(jié)合basigin,然后觸發(fā)緊密連接的形成,并進(jìn)入入侵感染的下一步。單個(gè)PfRh5、PfRipr和CyRPA的出現(xiàn)也表明,每種蛋白質(zhì)仍可用于合成復(fù)合物。

 

圖3:PfRipr在侵入紅細(xì)胞的裂殖子上的定位。用WGA(綠色)染色的紅細(xì)胞膜。左為共聚焦圖像,使用2D STED(MIP)可視化PfRipr。DAPI(藍(lán)色)。白條表示1μm。

 

展望

 

 

對(duì)紅細(xì)胞的侵入是人類宿主中瘧疾感染的關(guān)鍵階段。直到近,對(duì)所涉及的蛋白質(zhì)的相互作用和功能的研究是有限的,因?yàn)殛P(guān)鍵配體PfRh5的抑制*抑制感染的的入侵。使用PfRipr和CyRPA的條件表達(dá)和STED納米顯微成像,Cowman等揭示了PfRipr、CyRPA和PfRh5/PfRipr/CyRPA復(fù)合物在裂殖子入侵中的重要作用[2]。通過復(fù)合物與宿主受體basigin的結(jié)合,蛋白質(zhì)參與Ca2+釋放到紅細(xì)胞中。SP8 STED納米顯微鏡提供了必要的分辨率,以顯示PfRh5/PfRipr/CyRPA復(fù)合物在寄生蟲和宿主細(xì)胞之間界面處的形成。以前的研究表明,CyRPA將復(fù)合物與寄生蟲膜相連[8],但Cowman組進(jìn)行了額外的生化分析,結(jié)果顯示情況并非如此。相反,結(jié)果表明其他蛋白質(zhì)必須將復(fù)合物錨定到宿主細(xì)胞并指導(dǎo)它在頂端的形成。

 

未來的工作將有助于找到參與裂殖子/宿主細(xì)胞相互作用的新蛋白質(zhì),并了解Ca2+釋放在感染途徑中的功能作用。終,解剖宿主和病原體之間的相互作用將有助于找到更有效的方法來對(duì)抗瘧疾。

 

參考文獻(xiàn)

 

1. World Health Organization (WHO), World Malaria Report 2017 (WHO, Geneva, Switzerland, 29 November 2017)

 

2. Volz JC, Yap A, et al. (2016) Essential Role of the PfRh5/PfRipr/CyRPA Complex during Plasmodium falciparum Invasion of Erythrocytes, Cell Host Microbe 20 (1), 60-71, DOI: 10.1016/j.chom.2016.06.004

 

3. Delves M, Plouffe D, et al. (2012) The Activities of Current Antimalarial Drugs on the Life Cycle Stages of Plasmodium: A Comparative Study with Human and Rodent Parasites. PLoS Med 9(2): e1001169. DOI:10.1371/journal.pmed.1001169

 

4. Cowman, A.F., Crabb, B.S. (2006) Invasion of red blood cells by malaria parasites, Cell 124, 755–766, DOI: 10.1016/j.cell.2006.02.006

 

5. Weiss GE, Gilson PR, et al. (2015) Revealing the sequence and resulting cellular morphology of receptor-ligand interactions during Plasmodium falciparum invasion of erythrocytes. PLoS Pathog 11 (2), e1004670, DOI:      10.1371/journal.ppat.1004670

 

6. Tham WH, Healer J, et al. (2012) Erythrocyte and reticulocyte binding-like proteins of Plasmodium falciparum. Trends Parasitol 28 (1), 23–30, DOI: 10.1016/j.pt.2011.10.002

 

7. Chen L, Lopaticki S, et al. (2011) An EGF-like protein forms a complex with PfRh5 and is required for invasion of human erythrocytes by Plasmodium falciparum. PLoS Pathog 7 (9), e1002199, DOI: 10.1371/journal.ppat.1002199

 

8. Douglas AD, Baldeviano GC, et al. (2015) A PfRH5-based vaccine is efficacious against heterologous strain blood-stage Plasmodium falciparum infection in Aotusmonkeys, Cell Host Microbe 17 (1), 130–139,

DOI: 10.1016/j.chom.2014.11.017

 

9. Reddy KS, Amlabu E, et al. (2015) Multiprotein complex between the GPI-anchored CyRPA with PfRH5 and PfRipr is crucial for Plasmodium falciparum erythrocyte invasion, Proc. Natl Acad Sci USA 112 (4), 1179–1184,

DOI: 10.1073/pnas.1415466112

 

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