專業的浮游植物分析便攜式流式細胞儀,滿足實驗室、野外在線監測和水下應用 根據需要,CytoSense可升級為CytoBuoy或CytoSub。
荷蘭CytoBuoy公司是一家受歐盟資助、專業生產浮游植物流式細胞儀的公司。
傳統的流式細胞儀只能分析較小的細胞(< 15 mm),不適合分析體積較大的浮游生物細胞。從1986年開始,該公司就受荷蘭和歐盟資助,設計生產專為浮游生物分析設計的流式細胞儀——光學浮游生物分析儀(Optical Plankton Analyser,OPA)。
1996年,該公司提出了設計野外在線監測型流式細胞儀的理念,并連續10年獲得歐盟資助。在此基礎上,該公司設計生產了*臺便攜式浮游植物分析流式細胞儀——CytoSense,*臺在線監測型流式細胞儀——CytoBuoy,以及*臺水下流式細胞儀——CytoSub。其中CytoSense的特殊版本CytoSense GV型,可以直接分析帶氣囊的微藻樣品(如微囊藻、棕囊藻等),省去了破碎氣囊的復雜步驟。
根據需要,CytoSense可升級為CytoBuoy或CytoSub。CytoBuoy可以無線傳輸數據,傳輸距離達16 Km。CytoSub可以在水下200 m處正常工作。
新增“指紋”功能可以建立浮游植物數據庫,利用流式細胞儀進行浮游植物分類。
新增成像功能可以對感興趣的細胞進行拍照,獲取浮游植物細胞圖片。
CytoBuoy便攜式流式細胞儀可對水中從pico-(<1 mm)到meso-(>100 mm)級的浮游植物自動計數,測量樣品或亞群的顆粒數目和濃度,光學特性,顆粒長度和形狀,并可對多個類群進行分類。
分類類群包括:
1)藍藻:聚球藻、絲狀藍藻等
2)pico-級和micro-級真核生物
3)不同類型的大型種和硅藻:單個細胞、兩個細胞或鏈狀細胞等
4)隱藻
5)顆石藻或其顆石
6)非熒光細胞和非熒光顆粒
儀器特點: 1) 在線分析,樣品不需固定、運輸和儲藏 2) 不需采用過濾或其它方法來對樣品分級 3) 樣品不需濃縮或稀釋 4) 儀器自動測量,操作者不會干擾測量 5) 不需額外提供鞘液 6) 不需提供空氣 7) 沒有流路堵塞 8) 流路不會發生生 物污染9) 便攜、易運輸、防水或防濺水 10) 防震、防抖、耐沖擊 | 應用范圍 :1) 海洋生態學與淡水生態學 2) 海洋學與湖沼學 3) 河流、水庫、湖泊、海洋的監測與管理 4) 流域監測與管理 5) 水源地、水廠、污水處理廠的水質監測 6) 富營養化研究 7) 藻類環境生物學 8) 藻種鑒定 9) 有害藻華(HABs)預警 10) 校正衛星遙感數據 11) 微藻生物技術 12) 水產養殖 |
特征
當細胞顆粒在流動池中通過檢測區域時,CytoBuoy系列流式細胞儀可以掃描記錄各種光學信號(散射、熒光)的動態變化(*),這些信號包涵了豐富的細胞形態學信息,利用這些形態學信息可以建立浮游植物特征信息數據庫,進而利用CytoBuoy進行浮游植物的詳細分類,有助于了解浮游植物的種群變化和水華預警。
| CytoBuoy系列流式細胞儀還增加了獲得長條裝細胞(或細胞鏈)彎曲度的功能,這種新增加的二維信息為浮游植物分類提供了更全面的信息。 |
功能強大的分析軟件
主要技術指標
樣品類型: | 所有懸浮液中的顯微顆粒,包括細胞性顆粒和非細胞性顆粒;特別適合于浮游植物研究,單細胞、群體皆可。 |
樣品大小下限: | 標準版:1 m mpico版:0.4 mm |
樣品大小上限: | 直徑:700 m m長度:4 mm |
樣品密度: | 接近于水;沉降速率很高(>10 mm/s)的顆粒(如砂粒)不會被吸入流動室測量 |
樣品濃度下限: | 約102個顆粒/升 |
樣品濃度上限: | 約1010個顆粒/升 |
介質: | 水,鹽度范圍介于海水和淡水之間的所有水均可 |
進樣方式: | 泵吸式,適用于所有機型 |
進樣速度: | 20 ml/s或2 ml/s |
鞘液: | 無需外加鞘液,儀器直接利用樣品的過濾液作為鞘液,維護方便 |
測量指標: | 1)每個亞群或每個樣品的顆粒數目和濃度 2)每個顆粒、每個亞群或整個樣品的光學參數:前向光散射(FSC)、側向光散射(SSC)、熒光(zui多4個色帶) 3)每個顆粒、每個亞群或整個樣品的顆粒長度,zui大可達10 mm,精度0.5 mm 4)每個顆粒、每個亞群或整個樣品的形態學信息,例如鏈狀硅藻的彎曲度和細胞數目等 5)軟件(CytoQuickView和CytoClus)可利用細胞的形態學信息進行浮游植物分類,利用易發生水華的藻種的形態學信息有助于進行水華預警 |
儀器重量: | CytoSense:20 Kg(包括外殼 )CytoBuoy和CytoSub視浮標或防水外殼的重量而定 |
代表文獻(1) Dubelaar G. B. J., Gerritzen P. L., Beeker A. E. R., Jonker R. R., Tangen K., Designfirst results of CytoBuoy: a wireless flow cytometer for in situ analysis of marinefresh waters. Cytometry, 1999, 37: 247-254.
(2) Dubelaar G. B. J., Jonker R. R., Flow cytometry as a tool for the study of phytoplankton. Sci. Mar., 2000, 64: 135-156.
(3) Dubelaar G. B. J., Gerritzen P. L., CytoBuoy: a step forward towards using flow cytometry in operational oceanography. Sci. Mar., 2000, 64: 255-265.
(4) Dubelaar G. B. J., Geerders P. J. F., Jonker R. R., High frequency monitoring reveals phytoplankton dynamics. J. Environ. Monit., 2004, 6: 946-952.
(5) Dubelaar G. B. J., Geerders P. J. F., Innovative technologies to monitor plankton dynamics. Scanning flow cytometry: a new dimension in real-time, in-situ water quality monitoring. Sea Technol., 2004, 15-21.
(6) Takabayashi M., Wilkerson F. P., Robertson D., Response of glutamine synthetase gene transcriptionenzyme activity to external nitrogen sources in the diatom Skeletonema costatum (Bacillariophyceae). J. Phycol., 2005, 41: 84-94.
(7) Takabayashi M., Lew K., Johnson A., Marchi A., Dugdale R., Wilkerson F. P., The effect of nutrient availabilitytemperature on chain length of the diatom, Skeletonema costatum. J. Plankton Res., 2006, 28: 831-840.
(8) Dubelaar G. B. J., Casotti R., Tarran G. A., Biegala I. C., Phtoplanktontheir analysis by flow cytometry. In. Dolezel J., Greilhuber J., Suda J. (eds.) Flow Cytometry with Plant Cells. Wiley-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA, Weinheim. 2007.