乳酸脫氫酶（LDH）測試盒 

本品用于科研實驗,不用于臨床。

測定意義:
輔酶ⅠNAD(H)廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞中,NAD+是糖酵解(EMP)和三羧酸循環(TCA)的主要氫受體,生成的 NADH 經呼吸電子鏈(ETC)傳遞把電子交給氧,在合成 ATP 的同時,形成大量的 ROS,同時 NADH 再生為 NAD+。糖、脂、蛋白質三大代謝物質分解中的氧化反應絕大部分通過這一體系完成。NAD(H)含量和 NADH/NAD+比值的高低可用于評價糖酵解和 TCA 循環的強弱。較高的NAD(H)及 NADH/NAD+比值說明細胞呼吸耗氧量較高,處于過氧化狀態。此外,NADH/NAD+比值升高也可抑制糖酵解和 TCA 循環。另外,NAD+降解產物對細胞信號傳導、代謝和基因表達等具有重要的調控作用。

測定原理:
分別用酸性和堿性提取液提取樣品中 NAD+和 NADH,NADH 通過 PMS 的遞氫作用,還原氧化型噻唑藍(MTT)為甲瓚,在 570nm 下檢測吸光值;而 NAD+可被乙醇脫氫酶還原為 NADH,進一步采用 MTT 還原法檢測。

需自備的儀器和用品:
酶標儀、臺式離心機、移液器、96 孔板、研缽、冰和蒸餾水。

試劑的組成和配制:
酸性提取液:液體 50mL×1 瓶,4℃保存;
堿性提取液:液體 50mL×1 瓶,4℃保存;
試劑一:液體 10 mL×1 瓶,4℃保存;
試劑二:液體 3 mL×1 瓶,4℃保存;
試劑三:粉劑×1 瓶,-20 ℃保存,用時加入 3mL 蒸餾水,混勻,用不完的試劑 4℃保存一周;
試劑四:粉劑×1 瓶,4 ℃保存,用時加入 3mL 蒸餾水,混勻,用不完的試劑 4℃保存一周;
試劑五:液體 3.6mL×1 瓶,4 ℃保存;
試劑六:液體 30mL×1 瓶,4 ℃保存;
試劑七:液體 50mL×1 瓶,4 ℃保存。

NAD+和 NADH 的提取:

1 血清(漿)中 NAD+和 NADH 的提取:
NAD+的提取:按照血清(漿)體積(mL):酸性提取液體積(mL)為 1:5~10 的比例(建議取約 0.1mL 血清(漿),加入 1mL 酸性提取液),95℃水浴 5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 堿性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心 10min,取上清,置冰上待測。
NADH 的提取:按照血清(漿)體積(mL):堿性提取液體積(mL)為 1:5~10 的比例(建議取約 0.1mL血清(漿),加入 1mL 堿性提取液),95℃水浴 5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心 10min,取上清,置冰上待測。

2 組織中 NAD+和 NADH 的提取:
NAD+的提取:按照組織質量(g):酸性提取液體積(mL)為 1:5~10 的比例(建議取約 0.1g 組織,加入 1mL酸性提取液),冰浴研磨,95℃水浴 5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 堿性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心 10min,取上清,置冰上待測。
NADH 的提取:按照組織質量(g):堿性提取液體積(mL)為 1:5~10 的比例(建議取約 0.1g 組織,加入 1mL堿性提取液),冰浴研磨,95℃水浴 5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心 10min,取上清,置冰上待測。

3 細胞或細菌中 NAD+和 NADH 的提取:
NAD+的提取:先收集細胞或細菌到離心管內,棄上清,按照細菌或細胞數量(104 個):酸性提取液體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建議 500 萬細菌或細胞加入 1mL 酸性提取液),超聲波破碎(冰浴,功率20%或 200W,超聲 3s,間隔 10s,重復 30 次),95℃水浴 5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 堿性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心
10min,取上清,置冰上待測。NADH 的提取:先收集細胞或細菌到離心管內,棄上清,按照細菌或細胞數量(104 個):堿性提取液體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建議 500 萬細菌或細胞加入 1mL 堿性提取液),超聲波破碎(冰浴,功率20%或 200W,超聲 3s,間隔 10s,重復 30 次),95℃水浴 5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心10min,取上清,置冰上待測。


充分混勻,靜置 5min 后,20000g,25℃離心 5min,棄上清,沉淀中加入:

混勻,取 200μL 轉移至微量石英比色皿或 96 孔板中,570nm 下讀取對照吸光值 A1 和測定管吸光值 A2,計算△A=A2-A1。

注意事項:
1、如果一次性測定樣本數較多,可將試劑一、二、三和四按比例配成混合液。
2、對照管和測定管的測定步驟的區別:對照管加完試劑一、二、三、四和五后必須馬上加試劑六;測定管加完試劑一、二、三、四和五后必須反應 20min 后再加試劑六。
3、反應過程中注意避光。
4、若 NAD+測定中△A(A2-A1)≤0.0302,NADH 測定中△A(A2-A1)≤0.0222,說明樣本中輔酶含量較低,已低于檢測限,可做如下調整:(1)將測定管避光靜置時間 20min 延長到 60min;(2)在提取階段增加取樣量,即取 0.2g 樣本或 0.2mL 樣本加入 1mL 提取液。
5、由于每一個測定管需要設一個對照管,本試劑盒 100 管保證測 48 個 NAD+或 NADH.

NAD+和 NADH 含量的計算:
(一) NAD+含量的計算
標準條件下的回歸曲線為 y = 0.1475x + 0.0302,R2 = 0.9978;其中 y 為△A,x 為 NAD+濃度 nmol/mL
1、血清(漿)中 NAD+含量計算
NAD+含量(nmol/mL)=[(△A -0.0302)÷0.1475×V1) ]÷(V3×V1÷V2)=135.6×(△A -0.0302)

2、組織、細菌或細胞中 NAD+含量計算
(1)按樣本蛋白濃度計算
NAD+(nmol/mg prot)=[(△A -0.0302)÷0.1475×V1)]÷(V1×Cpr)= 6.8×(△A -0.0302)÷Cpr
(2)按樣本鮮重計算
NAD+(nmol/g 鮮重)= [(△A -0.0302)÷0.1475×V1)]÷(W×V1÷V2)= 13.6×(△A -0.0302)÷W
(3)按細菌或細胞密度計算
NAD+(nmol/104 cell)=[(△A -0.0302)÷0.1475×V1)]÷(500×V1÷V2)=0.027×(△A -0.0302)

(二)NADH 含量的計算

標準條件下的回歸曲線為 y = 0.1404x + 0.0222,R2 = 0.9976;其中 y 為△A,x 為 NADH 濃度 nmol/mL
1、血清(漿)中 NADH 含量計算
NADH 含量(nmol/mL)= [ (△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 142.5×(△A -0.0222)

2、組織、細菌或細胞中 NADH 含量計算
(1)按樣本蛋白濃度計算
NADH (nmol/mg prot)= [ (△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(V1×Cpr)= 7.1×(△A -0.0222)÷Cpr

(2)按樣本鮮重計算
NADH (nmol/g 鮮重)=[(△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(W×V1÷V2)= 14.2×(△A -0.0222)÷W

(3)按細菌或細胞密度計算
NADH (nmol/104 cell)= [ (△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(500×V1÷V2)=0.028×(△A -0.0222)
V1:加入反應體系中樣本體積,0.02mL;V2:加入提取液體積,2mL;V3:加入血清(漿)體積:0.1mL;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL; W:樣本質量,g;500:細胞或細菌總數,500 萬。

注 意: 檢測限為 0.1nmol/mL 或 0.1nmol/g 鮮重 或 0.001nmol/mg prot

乳酸脫氫酶（LDH）測試盒

生化試劑盒可以檢測的樣本類型有哪些?
生化試劑盒的實驗原理是基于化學反應,理論上是不受生物種屬及樣本類型的限制。生化試劑盒樣本檢測通常只分樣本類型,不分種屬。但是某些指標在不同種屬或類型樣本中的提取方式不同。因此,具體情況請參見說明書或與技術支持聯系確認。

生化試劑盒樣本檢測的一般要求:
1)于生化檢測而言,樣本無溶血、脂血、的現象。組織樣本需將血液洗凈擦干后再進行稱重處理。
2)樣本處理后盡快進行檢測,且保存于冰盒之上,待測。
求
3)樣本需澄清,若不澄清,需離心后取上清進行檢測(特殊指標除外)。
4)樣本值應在試劑盒線性范圍內,若超過線性范圍,需稀釋后再進行檢測,若低于檢測范圍,需增加樣本濃度后進行檢測。

微量法和分光光度法的區別?
分光光度法:主流測定體系為1mL,測試儀器分光光度計,能夠大限度地滿足絕大多數用戶的需要。
微量法:主流測定體系為0.2mL,測試儀器或分光光度計,測定更加簡便快捷。

試劑盒規格中是100管和50管是什么意思?
(1)50管/48樣:50管指能夠做50次測定,48樣指可以測試48個樣品。如果每個樣品重復測定3次,那么只能測定16個樣品。其中有2次測定用于
空白管或者對照管。值得特別注意的是,50管/24樣中由于每個樣品測定都需要做對照,因此能夠測定樣品的數量僅為8個(假設做3次重復)

(2)100管/96樣:100管指能夠做100次測定,96樣指可以測定96個樣品,如果每個樣品重復測定3次,那么只能測定32個樣品。其中有4次測定用
于空白管或者對照管。注意由于瓶璧和移液器吸附等,通常要比理論測定次數少1~3次。其它規格的含義依次類推。值得特別注意的是,100
管/48樣中由于每個樣品測定都需要做對照,因此能夠測定樣品的數量僅為16個(假設做3次重復)。

如何防止試劑盒失效?
不要過早訂購,以免試劑盒失效.收到試劑盒后,檢查外包裝是否正常。馬上打開,按照試劑盒說明書核對試劑數量是否正確,注意瓶中試劑狀態是否與說明書一致。如果有問題,或者懷疑,馬上聯系公司銷售,進行確認。如果沒有問題,請務必按照說明書進行試劑的保存。注意,不同試劑,可能需要分別保存在常溫(25°℃)、4℃和-20℃,務必分別按照要求保存,不要整個試劑盒放置于冰箱。

如何進行預測定?
(1)務必在7個工作日內進行預測定,以確定該試劑盒是否適合您的樣品,以免造成試劑盒和樣品的浪費。
(2)選擇2~3個預期差異比較大的樣品,嚴格按照說明書進行操作,注意儀器工作狀態,操作規范,控制好測定條件,尤其是溫度。
(3)如實與公司銷售溝通預測定結果,公司技術人員會確認測定結果是否正常,是否需要調整,如何進行調整,從而確保您的測定結果可靠。


比色皿有哪些規格?
(1)常量比色皿,如1mL和3mL等,常量法試劑盒都是選用1mL體系,只能用1mL比色皿,不可以用更大體積的比色皿,否則試劑量不夠,無法正常比色。

(2)微量比色皿,如0.25mL和0.5mL等,微量法試劑盒都是選用0.25mL比色皿。一般客戶都選擇使用標儀(需要自備酶標板)

(3)紫外波長檢測需要石英比色皿,不可以用普通玻璃比色皿。

(4)不同規格的比色皿,其外觀大小是一致的,都是1cm光徑(也有0.5cm光徑的比色皿,不常見,也可以用,但是計算時要注意修改計算公式),其內
容積差異在于壁的厚度。

代測的優點
(1)更加省事兒,不必為測定犯難。用戶只要提供樣品和想測定的指標,就不再需要為測定操心了,不再受到操作技能、儀器設備和時間
的限制,就等著拿到數據寫論文。

(2)測定數據更有保障。我們經過長期努力,建立了擁有豐富測定經驗的測定團隊、以進口儀器設備為主的
測定平臺(尤其是自動勻漿機和自動進樣器)和自己研發和生產的試劑盒,嚴格的測定質量管理體系,從而保證了測定結果的真實可靠。我們還建立了定制度。即先對用戶樣品進行預測定,并且與用戶就預測定結果進行充分溝通,在預測定結果得到用戶認可的情況下,才與用戶簽訂代測合同。

(3)防止樣品損失無論是用戶自己完成測定全過程,還是購買試劑盒完成測定,都可能因為缺乏測定經驗,導致測定失敗,
從而損失樣品的情況。對于生命科學研究而言,樣品是最珍貴的。樣品一旦損失,輕則造成研究進度被耽擱,重則造成研究失敗!代測能夠充分保證測定成功,從而防止了樣品損失。當然,樣品質量是測定成功的前提,而且樣品質量只有用戶自己才能控制和保證。

生化檢測試劑盒的基本原理
生化檢測試劑盒,又稱生化試劑盒,是利用特定的生物成分、動力學及化學反應等技術制備的試劑盒,用于檢測生理學、病理學、藥理學等領域中特定的生物分子或化學物質。生化檢測試劑盒包括底物、酶試劑盒、探針等多個組成部分,其中的是底物-酶法。

底物-酶法是生化檢測試劑盒檢測的基本原理。在該過程中,底物與酶在細胞膜上結合形成基質酶,進而形成底物-酶復合物。隨著時間的推
移,底物-酶復合物逐漸分解,釋放出分子小的底物和分子大的未消化的底物。未消化的底物可以被一系列的酶代謝,同時底物、酶和代謝產物都會對復合物的穩定性產生影響,從而影響檢測試劑盒的檢測結果。

生化試劑盒可以檢測的樣本類型有哪些?
生化試劑盒的實驗原理是基于化學反應,理論上是不受生物種屬及樣本類型的限制。生化試劑盒樣本檢測通常只分樣本類型,不分種屬。但是某些指標在不同種屬或類型樣本中的提取方式不同。因此,具體情況請參見說明書或與技術支持聯系確認。

生化試劑盒樣本檢測的一般要求:
1)于生化檢測而言,樣本最-好無溶血、脂血、黃-疸的現象。組織樣本需將血液洗凈擦干后再進行稱重處理。
2)樣本處理后最-好盡快進行檢測,且保存于冰盒之上,待測。
3)樣本需澄清,若不澄清,需離心后取上清進行檢測(特殊指標除外)。
4)樣本值應在試劑盒線性范圍內,若超過線性范圍,需稀釋后再進行檢測,若低于檢測范圍,需增加樣本濃度后進行檢測。