10187ES Plant Tissue PCR Kit (With Dye)
參考價 | ¥50.00 |
- 公司名稱 翌圣生物科技(上海)股份有限公司
- 品牌Yeasen/翌圣生物
- 型號10187ES
- 所在地上海市
- 廠商性質生產廠家
- 更新時間2023/11/27 13:00:10
- 訪問次數 197
5T | 50.00元 | 99 件可售 |
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供貨周期 | 現貨 | 應用領域 | 醫療衛生,生物產業,制藥 |
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產品簡介
Plant Tissue Direct PCR Kit (With Dye)植物組織直接PCR試劑盒是一款可直接對不同類型植物葉片進行PCR擴增的試劑盒,適應性廣、穩定性強。試劑盒采用的裂解緩沖液體系,可以快速的裂解多種植物樣品并釋放出基因組DNA,不需要除去蛋白、RNA或次生代謝產物等,即可將釋放出的基因組DNA作為模板直接用于PCR反應。此外,樣品使用量少,低至1 mm植物葉片即可進行實驗。
本試劑盒中提供的2× Plant Master Mix具有很強的擴增兼容性,能直接以待測樣品裂解液為模板,進行高效特異性擴增。該試劑為2倍濃縮PCR反應混合液,包含了用于PCR擴增除模板和引物外的所有組分,大大簡化操作過程,降低污染幾率。
該試劑盒可用于轉基因植株鑒定、植物基因分型等。
組分信息
類別 | 組分編號 | 組分名稱 | 10187ES05 | 10187ES50 | 10187ES70 |
Part I | 10187-A | Buffer P1 | 250 μL | 1.25 mL × 2 | 5 mL × 2 |
10187-B | Buffer P2 | 50 μL | 500 μL | 1 mL × 2 | |
Part II | 10187-C | 2 × Plant Master Mix* | 50 μL | 500 μL | 1 mL × 2 |
*2× Plant Master Mix:包含熱啟動Taq DNA聚合酶、dNTP混合物、MgCl2、反應緩沖液、PCR反應增強劑、優化劑以及穩定劑等,同時包含電泳Loading Buffer,PCR完成之后可直接電泳。
儲存條件
1. 試劑10187-A【Buffer P1】,置于2-8℃保存。有效期1年。
2. 試劑10187-B【Buffer P2】,中和裂解產物,利于更長時間保存樣本,置于2-8℃保存。有效期1年。
3. 試劑10187-C【2 × Plant Master Mix】,-25~-15℃保存,避免反復凍融。有效期1年。
使用說明
植物葉片
1、研磨裂解法:
a. 研磨儀破碎:將直徑5 mm左右的葉片置于50 μL Buffer P1中,用研磨儀加鋼珠(鋼珠直徑3mm左右,共2個)破碎葉片(45 Hz,1 min),葉片破碎后溶液呈現綠色,瞬時離心,上清液請放在4℃備用,取1 μL用于PCR擴增。
b. 槍頭搗碎:推薦使用幼嫩葉片。將直徑5 mm左右的葉片置于50 μL Buffer P1中,用槍頭將葉片搗碎,搗碎后溶液呈現綠色,瞬時離心,上清液請放在4℃備用,取1 μL用于PCR擴增。
1、加熱裂解法:推薦使用幼嫩葉片。將直徑5 mm左右的葉片置于50 μL Buffer P1中,95℃加熱5-10 min(確保裂解液 浸沒葉片),較難裂解的葉片(老葉片)可適當延長時間(10-20 min),加熱裂解后溶液呈現綠色,震蕩混勻,瞬時離心,上清液請放在4℃備用,取1 μL用于PCR擴增。
1、直接法:推薦使用幼嫩葉片。使用打孔器或者刀,將直徑1 mm左右的葉片直接加入到PCR反應體系中;復雜樣本或者是長片段的擴增,推薦使用直徑<1 mm的葉片。
PCR反應體系
組分 | 體積(μL) | 體積(μL) | 終濃度 |
2× Plant Master Mix | 10 | 25 | 1× |
Forward Primer (10 μM) | 0.5 | 1 | 0.2-0.25 μM |
Reverse Primer (10 μM) | 0.5 | 1 | 0.2-0.25 μM |
裂解產物(DNA模板) | 1 | 2 | - |
ddH2O | To 20 | To 50 | - |
表1 反應體系
【注】:各組分使用前應充分混勻。
模板加入量:小于PCR反應體系的5%,過多會嚴重抑制PCR反應,強烈推薦加入1 μL模板。葉片直擴優先推薦研磨儀裂解法。
引物終濃度:0.2-0.25 μM可以得到較好結果。反應性能較差時,可在0.1-0.5 μM范圍內調整引物濃度。
反應體系:推薦使用20 μL或50 μL,以保證目的基因擴增的有效性和重復性。
體系配制:配制好PCR反應體系,置于渦旋儀上渦旋混勻,瞬時離心將反應液集于管底。
對照反應:建議進行PCR時,設置陽性和陰性PCR對照反應以便于排除假陽性或假陰性的干擾。
為了更穩定的保存裂解后的模板,將轉移出來的上清液,按照裂解產物(DNA模板):Buffer P2 = 5:1的比例混合,混勻后-20℃保存,穩定保存隨時間和樣本狀態不同而有所不同。如果處理后的植物葉片上清液一周內用于PCR擴增,不用加Buffer P2,上清液請保存在-20℃。
反應條件
循環步驟 | 溫度 (°C) | 時間 | 循環數 |
預變性 | 94 | 5 min | 1 |
變性 | 94 | 10 sec | 35 |
退火 | 50-65 | 20 sec | |
延伸 | 72 | 1 min/kb | |
終延伸 | 72 | 5 min | 1 |
表2 反應條件 |
【注】:
退火溫度:請參考引物的理論 Tm 值,退火溫度可設置低于引物理論值 2-5℃。
延伸時間:需要根據片段的長度來確定,對于1 kb以內的DNA片段,建議延長時間為1 min。
注意事項
做葉片實驗時,建議使用新鮮采取的葉片組織,若為長期冷凍組織,需-80℃保存,應盡量避免反復凍融,以免造成模板降解,影響PCR效率。葉片組織以幼嫩為宜,若為成熟的葉片,避免使用葉片主脈部位組織。
建議擴增片段長度1 kb以內,以便擴增效率佳。
取樣時使用打孔器或者刀取適宜大小的樣本,樣本不同時,打孔器或者刀每次處理樣本前需清洗干凈。
對于葉片組織,建議取1-10 mm的葉片,過小會使PCR擴增產量低,過多會抑制PCR反應,采用加熱裂解法、槍頭搗碎、研磨儀破碎的方式處理植物葉片,處理后需震蕩離心,務必取上清液試驗,沉淀會嚴重抑制PCR反應。
為了您的安全和健康,請穿實驗服并佩戴一次性手套操作。
本產品僅作科研用途!
常見問題與解決方法
常見問題 | 可能原因 | 解決方法 |
陽性對照、待測樣本均無條帶 | PCR反應體系或反應條件不合適。 | 使用梯度PCR摸索PCR最佳反應條件。 |
PCR試劑保存不當失去活性。 | 2× PCR Mix應保存于-20℃,使用時避免反復凍融。若使用頻繁,可在4℃短時間存放。 | |
引物設計問題。 | 嘗試重新設計引物進行檢查。 | |
陽性對照有目的條帶,待測樣本無條帶或條帶弱 | 裂解液、中和液加入比例不當,裂解混合液影響PCR體系的pH值。 | 正常條件下,中和后的裂解混合液的pH應該在7-8左右(裂解產物和Buffer P2嚴格按照5:1的量進行中和)。 |
樣本裂解混合液保存不當或保存時間過久,DNA基因組已經降解。 | 裂解混合液液可在4℃保存5天,盡量使用新制備的裂解液混合液進行PCR。 | |
模板加入量不適合。 | 在反應體系<5%范圍內優化模板加入量。 | |
PCR循環數不足。 | 適當增加PCR的循環數,推薦35-40循環為佳。因模板復雜,一般PCR反應要比用純化的DNA模板多5-10個循環為佳。 | |
非特異性擴增 | PCR退火溫度太低,循環數、引物濃度或模板濃度太高。 | 增加PCR退火溫度,降低PCR循環數、引物濃度或模板濃度。 |
PCR引物錯配。 | 重新設計PCR引物。 | |
配制PCR反應體系時溫度太高或配制完成后放置時間太久。 | PCR反應體系的配制在低溫下進行,配制完成后盡快進行PCR擴增反應。 | |
陰性對照出現目的條帶 | 操作工具或試劑污染。 | 實驗所有試劑或器材均應高壓滅菌。操作時應小心輕柔,防止將靶序列吸入加樣槍內或濺出離心管外。 |
樣本間交叉污染。 | 每個取樣器只對一個樣本使用;或取完一個樣本后,將取樣器刃口浸入2%的次氯酸鈉溶液中,反復涮洗,然后用干凈的紙巾擦干殘液。 |