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Anipill®動物核心體溫監測膠囊

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上海玉研科學儀器有限公司是一家專業為生物、醫學、藥物研發等科研領域提供科學儀器和技術服務的公司。我們著力引進和開發應用成熟、性能先進的實驗設備和實驗方法,為科學研究和實驗室建設提供有效、合理的解決方案。

玉研儀器專注于生理、藥理、毒理等動物實驗和研究的相關領域,為客戶提供動物麻醉與輔助呼吸、生理信號檢測與記錄、動物給藥與暴露染毒、呼吸功能測量與肺功能研究、代謝與缺血缺氧研究、疼痛與炎癥研究、小動物行為學研究、神經科學研究、小動物活體成像、生化檢驗、動物手術與輔助設備、動物手術器械等多方面的科學儀器產品和定制化服務。

玉研儀器致力于打造動物科研儀器領域的百科全書!

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我們的使命:提供優質產品和高效服務,助力科研,成就科研








氣體麻醉劑,監護儀,血壓儀,生理信號采集系統,給藥系統

Anipill®核心體溫膠囊是一款可連續監測、記錄并無線傳輸核心體溫信號的微型膠囊。


適用動物及使用方式:小動物(大小鼠)可進行皮下或腹腔植入;中大型動物(比格犬、兔子、豬等)可選擇皮下或腹腔植入,也可經口腔攝入進入體內,通過胃、腸道,最后由排出。使用簡單方便,廣泛用于小動物以及中大型動物的核心體溫監測。


ANIMALS MONITORING的動物核心體溫膠囊包括:Anipill膠囊和Anilogger檢測儀。

Anipill膠囊用于植入(或吞服入)動物體內,采集動物的核心體溫;膠囊通過無線信號傳輸,將采集到的體溫信息傳輸給Anilogger監測儀,進行顯示和讀取,是款式高精度的核心體溫采集設備。



應用于體溫調節研究、感染學、生物節律分析、動物休眠、免疫和疫苗開發、毒理學研究等加強對實驗動物的體溫監測。可以連續的收集可靠和準確的核心溫度數據, 同時保持小動物的舒適性和可移動性等正常生理狀態。




Anipill膠囊適用于多種動物,如:大鼠、小鼠、比格犬、兔子等。



體溫膠囊的主要特點:

·膠囊體積小巧,可口服(視動物大小而定)或植入使用,使用簡單,對動物友好;

·無線無導管測量,測試對象亦無需實時佩戴監測器,實現無任何限制測量方案;

·監測器可同時監測 8 枚膠囊數據,且自身可最多 7 臺并聯,實現測量高通量;

·膠囊內置存儲記憶功能,可存儲多達 2000 組數據,無需擔心數據丟失;

·基于遙測技術,實時連續的核心溫度監測。




主要技術參數:

 測量參數:適用溫度25-45℃,精確度0.02℃,采樣頻率30Hz(可設定),內部可存儲2000組數據;

 傳輸參數:傳輸距離1-3m,傳輸頻率433Hz;

 使用壽命:20天

 規格參數:17.7*8.9mm,重1.7g;

 可同時監測并顯示8只動物體內膠囊的傳輸,并可通過PC/MAC觀察分析;

 每臺監測器可存儲150,185組數據;




應用1:體溫調節研究




在四只食蟹猴的腹腔分別植入膠囊,然后把它們與其他未植入的食蟹猴在標準條件下共同飼養。在接下來的一周內,每隔15分鐘測量一次體溫,實驗結果如圖。本實驗說明,Anipill系統可以用來連續、可靠地測量非人靈長類的體溫,并且測量結果可以清晰地反映出食蟹猴體溫的晝夜波動規律。


相關文獻:

· Laperrousaz et al., (2018) Lipoprotein Lipase Expression in Hypothalamus is involved in the Central Regulation of Thermogenesis and the Response to Cold Exposure

· Meyer et al., (2017) Body Temperature Measurements for Metabolic Phenotyping in Mice

· Ru?ange et al., (2020) Pre-warming before general anesthesia with iso?urane delays the onset of hypothermia in rats



應用2:動物生理學?時間生物學和睡眠研究

植入到非人靈長類腹膜的膠囊收集到的數據



在大鼠的腹腔內植入膠囊,7天后,監測以下三組大鼠的核心體溫在麻醉前后的變化趨勢:預熱至40℃(PW40, n=17);預熱至高于基線體溫1%(PW1%, n = 17);無預熱(NW, n = 17)。本實驗說明,在麻醉之前給大鼠進行預熱,有助于防止麻醉劑引起的體溫過低。


相關論文:

1.van der Vinne V, Pothecary C A, Wilcox S L, et al. Continuous and non-invasive thermography of mouse skin accurately describes core body temperature patterns, but not absolute core temperature[J]. Scientific Reports, 2020, 10(1): 20680.
2.Delezie J, Gill J F, Santos G, et al. PGC-1β-expressing POMC neurons mediate the effect of leptin on thermoregulation in the mouse[J]. Scientific Reports, 2020, 10(1): 1-12.
3.van der Vinne V, Tachinardi P, Riede S J, et al. Maximising survival by shifting the daily timing of activity[J]. Ecology letters, 2019, 22(12): 2097-2102.
4.Hong S H, Hong J H, Lahey M T, et al. A low-cost mouse cage warming system provides improved intra-ischemic and post-ischemic body temperature control–application for reducing variability in experimental stroke studies[J]. Journal of neuroscience methods, 2021, 360: 109228.
5.Belloch F B, Beltrán E, Venzala E, et al. Primary role for melatonin MT2 receptors in the regulation of anhedonia and circadian temperature rhythm[J]. European Neuropsychopharmacology, 2021, 44: 51-65.
6.Tabarean I V. Neurotensin induces hypothermia by activating both neuronal neurotensin receptor 1 and astrocytic neurotensin receptor 2 in the median preoptic nucleus[J]. Neuropharmacology, 2020, 171: 108069.
7.Fenzl A, Kulterer O C, Spirk K, et al. Intact vitamin A transport is critical for cold-mediated adipose tissue browning and thermogenesis[J]. Molecular metabolism, 2020, 42: 101088.




   

    

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