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當(dāng)前位置:上海書吉生物科技有限公司>>生命科學(xué)>>染料>> SYTO 9活細(xì)菌/死細(xì)菌雙染試劑盒
參 考 價 | 面議 |
產(chǎn)品型號
品 牌派萃
廠商性質(zhì)生產(chǎn)商
所 在 地上海市
更新時間:2024-11-15 08:56:24瀏覽次數(shù):851次
聯(lián)系我時,請告知來自 化工儀器網(wǎng)SYTO 9/PI 活細(xì)菌/死細(xì)菌雙染試劑盒
供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 40T |
---|---|---|---|
貨號 | SP4001-40T | 應(yīng)用領(lǐng)域 | 生物產(chǎn)業(yè) |
主要用途 | 活細(xì)菌 死細(xì)菌雙染 |
SYTO 9活細(xì)菌/死細(xì)菌雙染試劑盒產(chǎn)品簡介:
SYTO 9活細(xì)菌/死細(xì)菌雙染試劑盒是一款方便且操作簡單的試劑盒,利用SYTO 9綠色核酸染料和碘化丙啶(PI)紅色熒光核酸染料來進(jìn)行細(xì)菌活力的檢測,適用于大量的細(xì)菌種屬,包括蠟樣芽孢桿菌、枯草芽孢桿菌、產(chǎn)氣莢膜桿菌、大腸桿菌、肺炎克雷伯氏菌、草分枝桿菌、綠膿桿菌、Staphylococcus aureus、奧拉尼堡沙門氏菌、宋內(nèi)志賀氏菌和化膿性鏈球菌。
SYTO 9活細(xì)菌/死細(xì)菌雙染試劑盒的工作原理在于:SYTO 9和PI的光譜特征以及穿透健康細(xì)菌細(xì)胞的能力不同。單獨使用時,SYTO 9能對群體內(nèi)的所有細(xì)菌進(jìn)行標(biāo)記—具有完整膜和受損膜的細(xì)菌;相反,PI只能滲透進(jìn)入受損的膜,PI的插入會引起SYTO 9染色熒光的降低,當(dāng)體系內(nèi)加入兩種染料時。因此,通過適量比例的SYTO 9和PI的混合染色,具有完整膜結(jié)構(gòu)的細(xì)菌呈綠色熒光,而具受損膜結(jié)構(gòu)的細(xì)菌呈紅色熒光。兩者染料的最大激發(fā)和發(fā)射波長分別是480/500nm(SYTO 9)和 490/635nm(PI)。背景基本無熒光。本試劑盒兼容于熒光顯微鏡,熒光光度計、熒光酶標(biāo)儀、流式細(xì)胞儀或其它熒光檢測儀器。
產(chǎn)品組成:
編號/組分 | SP4001-40T | 規(guī)格 | 保存方法 |
SP4001-A | SYTO 9 Solution (3.34mM) | 60μl | -20oC避光 |
SP4001-B | PI Solution(20mM) | 60μl | -20oC避光 |
SP4001-C | Mounting oil, for bacteria immobilized on membranes | 2ml | -20oC保存 |
【注】組分C熒光顯微鏡檢測方法中才會應(yīng)用的到,具體用法見注意事項3)。
試劑盒規(guī)格說明(按照建議的試劑稀釋倍數(shù)和單次測試體積來計算):保存與運輸方法:-20℃避光保存,有效期一年。 冰袋運輸。
熒光顯微鏡檢測:1ml菌液加入3μl染料混合液(SYTO 1.5μl +PI 1.5μl),可做40次獨立測試。
熒光酶標(biāo)儀檢測:2ml無菌水加入12μl染料混合液(SYTO 6.0μl +PI 6.0μl),制備成2×工作液。按照100μl染料混合液加入100μl菌液的比例使用,可做200次獨立測試。
流式細(xì)胞儀檢測:2ml菌液加入6μl染料混合液(SYTO 3.0μl +PI 3.0μl),可做20次獨立測試。
使用方法(以下步驟僅用作示例以指導(dǎo)科研人員開展自身細(xì)菌樣本的染色。)
一、培養(yǎng)條件和細(xì)菌懸液的制備:
【注意】:用本試劑盒進(jìn)行細(xì)菌染色,務(wù)必要小心去除培養(yǎng)基殘留,因為,核酸和其它培養(yǎng)基成分可能以不可預(yù)料的方式與SYTO 9和PI結(jié)合,導(dǎo)致染色結(jié)果發(fā)生不可接受的變動。簡單的一次清洗步驟通常足以去除培養(yǎng)基內(nèi)含的培養(yǎng)基成分干擾物殘留。不建議使用磷酸鹽清洗緩沖液,因此可能降低染色效率。
1.1 用營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)大腸桿菌或Staphylococcus aureus(30ml)使其生長至對數(shù)生長后期。
1.2 于10000×g離心10-15min,濃縮25ml細(xì)菌培養(yǎng)物。
1.3 吸走上清液,用2ml 0.85% NaCl或適當(dāng)緩沖液來重懸沉淀。
1.4 取1ml重懸菌液分別加入含20ml 0.85% NaCl或適當(dāng)緩沖液的30-40ml離心管(設(shè)置為活細(xì)菌組),用含20ml 70%異丙醇(也可以用其他方法比如高熱處理殺死細(xì)菌)的30-40ml離心管(設(shè)置為死細(xì)菌組)。
1.5 兩管樣品(分別為活細(xì)菌組和死細(xì)菌組)于室溫孵育1h,每隔15min顛倒混勻一次。
1.6 兩管樣品(分別為活細(xì)菌組和死細(xì)菌組)于10000×g離心10-15min。
1.7 用20ml 0.85% NaCl或適當(dāng)緩沖液重懸沉淀,并且按照步驟1.6再離心一次。
1.8 分別用10ml 0.85% NaCl或適當(dāng)緩沖液重懸兩管樣品。
1.9 分別取3ml菌液測定670nm的光密度(OD670),用玻璃或丙烯酸酯比色皿(1cm路徑)。
1.10 對于大腸桿菌或Staphylococcus aureus的建議染色濃度,根據(jù)你的儀器類型(熒光顯微鏡、熒光光度經(jīng)、熒光酶標(biāo)儀)或流式細(xì)胞儀來參考相應(yīng)部分的染色條件。
二、染色條件的優(yōu)化:
試劑盒內(nèi)的兩種染料都經(jīng)過平衡優(yōu)化,按照1:1的比例進(jìn)行混合用于絕大多數(shù)的樣本都能得到良好的區(qū)分活/死細(xì)菌。偶然情況下,兩種染料的混合比例需根據(jù)實際需求進(jìn)行優(yōu)化調(diào)整。比如:在待檢樣本中,綠色熒光太突出,建議要么降低SYTO 9濃度,要么提高PI濃度。
為了全面優(yōu)化染色條件,建議測試梯度濃度的SYTO 9,每一種濃度與梯度濃度的PI進(jìn)行組合染色。建議按照1ml細(xì)菌懸液加入3µl不同混合比率的染料預(yù)混液。
[注]:SYTO 9 +PI 對細(xì)菌的染色請按照說明書建議的15min來操作,不要超過30min。 SYTO 9有很好的細(xì)菌滲透性,我們給的實驗條件都是優(yōu)化過。 SYTO 9只有在哺乳動物細(xì)胞染色,可能會延長染色時間到120min。
由于染的是活菌+死菌的比例,請染色后盡快觀察,不要超過1h。 另,染色后基本是不用清洗的,除非覺得背景熒光很高,就是非細(xì)菌的菌體部分都能看到熒光,才有必要簡單清洗一次。
三、熒光顯微鏡操作步驟:
活菌和死菌的熒光可能用標(biāo)準(zhǔn)的熒光素長通濾片設(shè)置來同時觀察。替代方案的話,活菌(綠色熒光)和死菌(紅色熒光)可分別用熒光素和Texas Red帶通濾光片設(shè)置。用于本試劑盒檢測的建議熒光顯微鏡濾片設(shè)置見表1。
表1 適用于本試劑盒檢測用的常見濾光片特征:
Omega濾光片* | Chroma濾光片* | 注意事項 |
XF25, XF26, XF115 | 11001, 41012, 71010 | 用于同時觀察SYTO 9和PI染色的長通和雙發(fā)射濾光片 |
XF22, XF23 | 31001, 41001 | 僅用于觀察SYTO 9的帶通濾光片 |
XF32, XF43, XF102, XF108 | 31002, 31004, 41002, 4100 | 僅用于觀察PI的帶通濾光片 |
用于熒光顯微鏡觀察的推薦帶通濾光片。Omega濾光片由Omega Optical提供,Chroma濾光片由Chroma Technolog公司提供。 |
3.1 在微量離心管內(nèi)組合等量的組分A(SYTO 9)和組分B(PI),混勻。
3.2 每1ml細(xì)菌懸液內(nèi)加入3μl染料預(yù)混液。按照建議的稀釋倍數(shù),最終得到的染色工作液內(nèi)含0.3% DMSO。更高濃度的DMSO可能對染色產(chǎn)生副效果。
3.3 混勻后室溫避光孵育15min。
3.4 吸5μl染色的細(xì)菌懸液到載玻片上,并蓋上18mm方形蓋玻片。
3.5 根據(jù)表1選擇熒光顯微鏡上合適的濾片來觀察。
四、熒光光度計操作步驟:
4.1 調(diào)整大腸桿菌懸液(活和殺死)使其密度為1×108個細(xì)菌/ml(~0.03 OD670)或Staphylococcus aureus懸液(活和殺死)使其密度為1×107個細(xì)菌/ml(~0.15 OD670)。用于熒光光度計檢測,Staphylococcus aureus懸液的濃度通常比大腸桿菌少10倍。
4.2 參考表2在1cm 玻璃、丙烯酸酯或石英熒光比色皿混勻五種不同比例的細(xì)菌懸液。每個樣本的總體積為3ml。
4.3 在微量離心管內(nèi)分別加30μl組分A(SYTO 9)和30μl組分B(PI),混勻。
4.4 每組不同比例的細(xì)菌懸液內(nèi)加入9μl染料預(yù)混液(5個樣本×9μl =45μl總量),用槍上下吹打數(shù)次使其混勻。
4.5 室溫避光孵育15min。
4.6 熒光測定和數(shù)據(jù)分析:
①用熒光光度計測定每組細(xì)菌懸液(Fcell)的熒光發(fā)射光譜(激發(fā):470nm,發(fā)射:490-700nm)
②分別測定發(fā)射光譜在510-540nm(em1,綠色)和620-650nm(em2,紅色)的累積熒光,并計算累積熒光比值:RatioG/R=Fcell,em1/Fcell,em2
③以大腸桿菌懸液內(nèi)活細(xì)胞的占比為橫坐標(biāo),以累積綠色熒光與紅色熒光比(RatioG/R)為縱坐標(biāo),制圖
五、熒光酶標(biāo)儀操作步驟:
針對細(xì)菌懸液,用熒光酶標(biāo)儀的測定條件與熒光光度計的基本類似。如同熒光光度計的檢測步驟,染料濃度相同于熒光顯微鏡的建議濃度,綠/紅熒光比與活細(xì)菌相對數(shù)量呈正比。
5.1 調(diào)整大腸桿菌懸液(活和殺死)使其密度為2×108個細(xì)菌/ml(~0.06 OD670)或Staphylococcus aureus懸液(活和殺死)使其密度為2×107個細(xì)菌/ml(~0.3 OD670)。用于熒光酶標(biāo)儀檢測,Staphylococcus aureus懸液的濃度通常比大腸桿菌少10倍。
5.2 參考表3在16×125mm高硼硅玻璃培養(yǎng)管內(nèi)混勻五種不同比例的細(xì)菌懸液(大腸桿菌或Staphylococcus aureus)。每個樣本的總體積為2ml。
5.3 在微量離心管內(nèi)分別加6μl組分A(SYTO 9)和6μl組分B(PI),混勻。
5.4 通過將所有的12μl上述預(yù)混液加入2ml無菌的dH2O,混勻后制備2×染色混合液。
5.5 吸100μl細(xì)菌懸液混合物到平底96孔板的各孔內(nèi),建議每個制備物做三個平行。96孔板的邊緣孔通常空置以避免假讀數(shù)。
5.6 更換新的槍頭,每孔加入100μl 2×染色混合液,上下吹打使充分混勻。
5.7 室溫避光孵育15min。
5.8 熒光測定和數(shù)據(jù)分析:
①以~485nm為激發(fā)波長,~530nm為發(fā)射波長(emission 1,綠色)來測定每孔熒光
②以~485nm為激發(fā)波長,~630nm為發(fā)射波長(emission 2,紅色)來測定每孔熒光
③通過測定兩種發(fā)射波長下的熒光強光,并計算熒光比值:RatioG/R=Fcell,em1/Fcell,em2
④以大腸桿菌懸液內(nèi)活細(xì)胞的占比為橫坐標(biāo),以RatioG/R為縱坐標(biāo),制圖
六、流式細(xì)胞儀操作步驟:
儀器的檢測配置可能要因?qū)嶋H情況來調(diào)整,但此處列出的檢測技術(shù)和設(shè)置參數(shù)適用于市場上絕大多數(shù)流式細(xì)胞儀。
6.1 調(diào)整大腸桿菌懸液(活和殺死)使其密度為1×108個細(xì)菌/ml(~0.03 OD670),之后用無菌dH2O稀釋100倍使其最終密度為1×106個細(xì)菌/ml。
6.2 參考表4在16×125mm高硼硅玻璃培養(yǎng)管內(nèi)混11種不同比例的細(xì)菌懸液。每個樣本的總體積為2ml。
注意事項:
1由于試劑盒內(nèi)SYTO 9和PI的組分量少,室溫回溫充分融化后,務(wù)必低速離心沉至管底后再開蓋。
2兩款探針溶液本身就是溶于DMSO中,所以后續(xù)無需再單獨添加,第一次使用可將SYTO 9和PI根據(jù)單次用量分裝保存,密封后置于≤-20℃避光保存。
3組分C(Mounting oil)主要應(yīng)用于熒光顯微鏡檢測法,菌液加到載玻片后,接著滴1-2滴組分C用于將細(xì)菌固定在膜上,25℃的折射率是517 ± 0.003。不要用作浸油(Immersion oil)。
4SYTO 9和PI結(jié)合核酸,PI是潛在的誘變劑,目前沒有數(shù)據(jù)闡明SYTO 9的誘變性或毒性,兩種試劑使用都需做恰當(dāng)防護(hù)。DMSO能促進(jìn)有機分子進(jìn)入組織。強烈建議處理DMSO儲存液時戴雙層手套。對于核酸染料,含此類染料的試劑經(jīng)活性炭吸附后再進(jìn)行廢液處理?;钚蕴恐蠼?jīng)焚燒來破壞染料。
5為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。
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