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Folin——酚試劑的配置

2015-8-17  閱讀(9220)

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. Folin——酚試劑甲

溶液1):1:2g無水碳酸鈉溶于100m10.2mol/l氫氧化鈉中(以配制成 5X),用時稀釋5倍。

溶液2:0.5g 五水硫酸銅溶于100ml1%酒石酸鉀鈉(或酒石酸鈉)溶液。將稀釋后

的溶液 1 與溶液 2 ,以50:1的比例混合。混合后即為Folin——酚試劑甲,此試劑只

能用一天,過期失效。

.Folin——酚試劑乙

原溶液度為2moL/L使用前需稀釋一倍,用多少稀釋多少,使其zui后濃度為 1moL/L,

此為Folin——酚試劑乙應用液。Folin——酚試劑乙原液平時應封閉貯存于 4°C冰箱

中避光

保存。

.操作方法

標準曲線的制作:取14支試管分成兩組,按下表順序加入試劑,混勻,于室溫

放置10分鐘。再加入0.5毫升試劑乙,立即搖勻,在室溫放置 30 分鐘,然后于

500nm 處比色。測定光密度值。取兩種測定的平均值,以蛋白質濃度為橫座標,

光密度值為

縱座標,繪制標準曲線為

定量的依據。

試劑/管號

0

1

2

3

4

5

6

BSA/ml(250ug/ml

0

0.1

0.2

0.4

0.6

0.8

1.0

蒸餾水/ml

1.0

0.9

0.8

0.6

0.4

0.2

0

試劑甲/ml

5

5

5

5

5

5

5

試劑乙/ml

0.5

0.5

0.5

0.5

0.5

0.5

0.5

樣品測定:

1)取毫升樣品溶液(約含 20-250微克多肽或蛋白質)加入 5 毫升試劑甲混勻,

于溫室放置 10 分鐘。

2)加入0.5毫升試劑乙(Folin——酚),立即搖勻,于室溫保溫 30 分鐘:然后

500nm處比色,以 1 毫升水代替樣品作空白對照。測定后,可以從標準曲線中查出

未知樣品濃度。若用 0.5 厘米光程的比色杯進行比色,可按下面方法進行操作:取

0.2 毫升樣品溶液(約 5-100微克多肽或蛋白質),加入 1 毫升試劑甲(可選用

0.3-0.5 厘米直徑的小試管)混勻,10分鐘以后,再加入 0.1 毫升試劑乙,立刻混

勻,30 分鐘后比色一般來說,若多肽或白質濃度在 2-25 微克,則采用波長

755nm,而 25 微克以上則采用 500nm 比色為宜。


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